Culture Cellulaire

But des manipulations de culture cellulaire : Le but de la culture cellulaire ou plutôt appelé maintenance cellulaire a été de maintenir en vie deux lignées cellulaire (balb/c 3t3 et balb/c 10.1) pendant 4 semaine à une concentration viable pour la survie des cellules. Les deux lignées cellulaires se sont développés dans un milieu sélectif favorable à leurs croissances (DMEM). Tous les 2 ou 3 jours les cellules sont détachées du fond de la boite de pétri grâce à de la trypsine 1x, les cellules

 Fiche synthétique Mise en place de deux protocoles de cultures cellulaires de fibroblastes à partir d’embryons d’œufs de pintade Objectif – notre but était de réussir une culture cellulaire à partir d’embryon d’œuf. Cette méthode est très délicate autant dans l’extraction que l’entretien des cellules de l’embryon. Techniques – Nous avons utilisé, pour cela, deux méthodes différentes pour augmenter nos chances de réussite. La première méthode est rapide à réaliser ; après extraction

Protocole de culture cellulaire Décongélation : 1. Décongeler le cryotube, soit en le mettant dans le creux de la main, soit dans l’incubateur. (ne pas attendre que la culture dégèle complètement) 2. Sous la hotte, transférer tout le contenu du cryotube dans un tube à centrifugation avec une pipette stérile de 1mL. 3. Compléter à 10mL avec du milieu de culture froid, mélanger par inversion et centrifuger pendant 6 minutes à 2500

du milieu de culture. Il suffit pour cela de compter pour chaque dilution de référence, dont on a mesuré l'absorbance, le nombre correspondant de cellules par mL. On peut ainsi construire la courbe traduisant les variations de la concentration en nombre de cellules par mL en fonction de l'absorbance (ou de la transmitance) du milieu. La mesure du nombre de cellules La variation de concentration exprimée en grammes par litre informe sur la croissance d'une population cellulaire. On peut toutefois

Compte rendu : Différents types de cultures cellulaires Partie 1 : But : Le but de ce TP est de réaliser deux types de cultures : une culture primaire de cellules adénohypophysaires de grenouille et une secondaire de neuroblastomes, puis de comparer la prolifération et les caractéristiques de ces deux types de cellules (LA et NG). Principe : Une culture cellulaire est le maintien en dehors de l’organisme des cellules non organisées en tissu mais capable de se diviser in vitro et d’exprimer

stiedae et au niveau du corps réfringent chez E. magna et E. Intestinalis. L’étude in-vitro a démontré que l’antisérum, dirigé contre la protéine de fusion après 6h d’incubation, induit une réduction de pénétration de sporozoites dans les cultures de cellules MDBK de 43 %. Mots clés : Eimeria, sporozoite, antigène, vaccin génie-génétique, in-vitro. Abstract Coccidiosis is a disease which causes an economic importance in the poultry and rabbit

Les conditions de culture Le matériel Les milieux de cultures Différents types de culture Culture primaire Lignées ou cellules tumorales Application sur hepatocytes de souris  Flacons     En polystyrène optiquement clair stérile Traités ou non pour adhérence De contenance et surface différentes Plaques multipuits    En polystyrène optiquement clair stérile Traités ou non pour adhérence À fond plat et couvercle  Boites   En polystyrène

1 Voies d’entrée dans l’organisme . . . . . . . . . . . . 19 1.2.2.2 Translocation et devenir dans l’organisme . . . . . 22 1.2.2.3 Effets sur la santé humaine . . . . . . . . . . . . . . 23 1.3 Effets biologiques des nanoparticules à l’échelle cellulaire et moléculaire . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 25 1.3.1 Effets chez les Procaryotes . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 25 1.3.2 Effets chez les Eucaryotes . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 28 1

Alice Atger Laurène Bach Série 1 Culture Cellulaire Introduction La culture cellulaire est une technique de laboratoire permettant le maintien en vie et la multiplication de cellules en conditions in-vitro dans un but d'expérimentation scientifique. Lors de ce TP, nous allons utiliser une méthode de culture monocouche en utilisant la ligné U2-OS, cellules adhérentes dérivées d'un ostéosarcome humain. L'objectif de cette méthode est d'effectuer un test de toxicité de l'Actinomycine

distinguer de quelques autres types cellulaires, présentes dans l’embryon au stade du blastocyte (ou blastula), en d’autres termes dans un embryon de 5 à 7 jours (voir image ci-contre). On les appelle "souches" car elles vont être à l'origine des lignées cellulaires d'un individu [1]. Elles peuvent être séparées et cultivées in vitro à l'état polyvalent et indifférencié. On peut les rendre, à partir de cet état, des cellules spécifiques à un tissu cellulaire donné (cellules musculaires, cellules