EDTA

présent dans votre eau alors que l'EDTA est le titrant. Pour l'expérience qui sera effectuée, le schéma de la page suivante présente le montage servant à titrer la CaCO3 dans les échantillons d'eau. Au fur et à mesure que vous ajouterez du titrant EDTA à la solution, ce dernier formera des liens avec les ions métalliques et la couleur de la solution, qui était d'abord rosée, tournera au bleu. C'est grâce à cette réaction (et au volume d'EDTA qui sera utilisé et que vous prendrez en note) que vous

CORRECTEMENT UN PATIENT Vérifier son identité en questionnant le malade : nom, nom de jeune fille, prénom et date de naissance car homonymies usurpation d ’identité, si doute sur l ’identité faire une détermination du groupe simplifié. - Prélever sur tube EDTA ( bouchon violet) 10ml (acide éthylène diamine tétra acétique) Étiquettes à coller immédiatement après le prélèvement. Groupe ABO AB : Contrôle ultime « administratif  » +++++++++++ Comme dans pays anglo-saxons toujours « double check »

graduée un agitateur magnétique et son barreau un erlenmeyer de 100 mL du papier filtre une éprouvette graduée de 20mL minimum du papier pH au moins 50 mL d’une solution d’EDTA de concentration 0,020 mol.L–1 (dans une fiole d'1L 5,85g d'acide EDTA + 50 mL de NaOH à 2 mol.L–1 + reste d'eau). au moins 20mL d’ammoniaque à environ 0,5 mol.L–1. un compte goutte de N.E.T. EAU SAVONNEUSE, etc. Au bureau : deux montages à reflux avec des ballons de 250mL deux éprouvettes graduées de 100mL eau

échantillons d’ADN, entier ou digéré par des enzymes de restriction. Les fournisseurs proposent toute une gamme d’ADN de diverses sources digéré ou non par des enzymes. Les échantillons d'ADN peuvent être obtenus en solution dans un tampon TE (Tris EDTA) ou lyophilisés. Dans ce cas, ils sont remis en solution dans du tampon TE.  Les solutions d'ADN peuvent être conservées indéfiniment à - 20 °C.  Les échantillons d’ADN sont le plus souvent distribués par les fournisseurs avec du colorant de charge

potables, il est souhaitable d’avoir TH ( 30, l’idéal étant de 12 à15. Détermination de la dureté totale Pour doser l’ensemble des ions Ca2+ et Mg2+, on utilise une réaction de complexation de ces ions par l’Acide Ethylène Diamine Tétraacétique (EDTA). L’équivalence de ce dosage est marquée par le virage de couleur de la solution en présence d’un indicateur coloré le noir d’ériochrome T (NET). Remarques : Pour éviter les problèmes de précipitation de ces ions on travaille à un pH = 10 grâce

Hémoculture Tube avec citrate de sodium Tube avec activateur de caillot, avec ou sans gel séparateur Tube avec héparine (sodium/lithium) Tube avec EDTA Tube avec oxalate de potassium/fluorure de sodium (inhibiteur de la glycolyse) Tube avec citrate de sodium (sédimentation) » ORDRE DES TUBES (PONCTION CAPILLAIRE) Gaz capillaire Micro-collecteur avec EDTA Micro-collecteur avec héparine (sodium/lithium) Micro-collecteur avec ou sans activateur de caillot, avec ou sans gel séparateur Tous les

n(EDTA)= n(H+) Test 1 On obtient: Veq(NaOH) = 20,50 mL Calcul de la concentration de C(EDTA) : C(EDTA) = n(NaOH) / 2.Veq(EDTA) = C(NaOH).Veq(NaOH) / 2.V(EDTA) = 0,0484 moles/L Calcul d’incertitude : ΔC(EDTA) = C(EDTA) x [ ΔC(NaOH)/C(NaOH) + ΔVburette/Vburette + ΔV(EDTA)/V(EDTA) ] ΔVburette= 9.10^(-4) Vburette= 20,5 mL ΔC(NaOH)= 9.10^(-4) C(NaOH)= 0,0945 M C(EDTA)=0.0484

glucose, 8g de peptone et 4 g d’extrait de levure et compléter le volume ( 400ml) à l’aide de l’eau distillé. Milieu Sabouraud Pour 400 ml prélever 61,4 g de milieu de milieu Sabouraud et compléter le volume (400ml) à l’aide de l’eau distillée. EDTA pH 8,5 C avec m= masse d’EDTA ; M= masse moleculaire d’EDTA( 292,2) et v = volume de solution à préparer (100ml) ; C= concentration d’EDTA(0,5M) m = MCV = 14 ,62g Prélever 14,62g d’EDTA puis compléter le volume à 100 ml et ajuster le pH

papier d’aluminium) 3 pétris gélose LB-ampicilline (50µg/mL) 1 pétri gélose LB 50mL de CaCl2 à 100mM, 4°C Solution saturée de bactéries DH5alpha préparée d’avance par l’instructeur Tampons P1, P2, N3, PB, PE Tampon d’élution TE (10mM Tris – 1mM EDTA) ddH2O Éthanol Culture de bactéries transformées avec pGFP-actin Pipettes pasteur 9 pouces pour patin Tubes eppendorf stériles et support Colonnes minipreps Qiagen Briquet Seau et glace Instruments : Incubateur agitateur Spectrophotomètre

pour l’extraction : Méthode 1 : Peser 50 mg de feuilles ((1) pour chaque conditions) et les broyer dans un tube eppendorf en présence du volume adéquat de tampon A = 200 µL. (2) Composition Tampon A = 0.5% SDS, 250mM NaCl, 100mM Tris-HCl pH 8.0, 25 mM EDTA. Centrifugation 5 min (3) On prelève le surnageant et ajoute un volume équivalent d’isopropanol (4) On Incube 15 min dans la glace (5) On centrifuge 10 min (5) Jette le surnageant et rincer le culot avec 500 µl d’éthanol 70% (6) Centrifuge 5 min puis