Tartrate

les sucres réducteurs. C’est le cas du glucose. • Le réactif de Fehling est obtenu par réaction chimique entre une solution de sulfate de cuivre II et une solution basique de tartrate de sodium (ou de potassium). À ce pH, les ions Cu2+ devraient être précipités sous forme Cu(OH)2 mais, complexés par les ions tartrate notés ici Y4– , ils sont maintenus en solution. Le test se déroule à chaud. Il s’agit d’une réaction d’oxydoréduction entre les couples CuY2–/Cu(I) (sous forme de précipité rouge

d’un bec bünsen. Le contenu du tube qui était bleu au départ devient de couleur rouge brique. Voir document 12 de l’annexe en couleur p.VII. Pour obtenir la liqueur de Fehling, on mélange une solution de sulfate de cuivre avec une solution d’ions tartrate. On ajoute à ce mélange une solution d’hydroxyde de sodium pour que le milieu soit basique. Normalement, en milieu basique, les ions cuivre précipitent en donnant de l’hydroxyde de cuivre (II), mais, dans la liqueur de Fehling, ils sont dissimulés

l'incolore. Passer à l' étape 4. (Analyse avec AccuVac : étape 3) Les éléments suivants ne causent pas d'interférence lorsque leur concentration ne dépasse pas 1000 mg/L : Pyrophosphate, tétraborate, sélénate, benzoate, citrate, oxalate, lactate, tartrate, formate, salicylate, Al 3+ , Fe 3+ , Mg 2+ , Ca 2+ , Ba 2+ , Sr 2+ , Li + , Na + , K + , NH 4 + , Cd 2+ , Mn 2+ , NO 3 – , NO 2 – , SO 4 2– , SO 3 2– , Pb 2+ , Hg + , Hg 2+ , Sn 2+ , Cu 2+, Ni2+, Ag+

l’aldéhyde : – + 2 [Ag(NH3)2]+ + RCHO + H2O → 2 Ag + RCO2 + NH3 + 3 NH4 . On observe l’apparition d’un dépôt d’argent sur les parois du tube à essais (« miroir d’argent »). La liqueur de Fehling est une solution d’ions Cu2 + complexés par les ions tartrate – (–O2C–CHOH–CHOH–CO2 ). En milieu basique, ce complexe oxyde les aldéhydes. 2 [Cu(O2C–CHOH–CHOH–CO2)2]2 – + RCHO + 5 HO– – – → Cu2O + RCO2 + 4 –O2C–CHOH–CHOH–CO2 + 3 H2O On observe un précipité rouge brique lié à la formation de Cu2O. Le

électroosmotique est ainsi inversé. Seuls seront détectés les anions dont les mEP seront supérieures à mEOS (fig.8 .6). anions : 1 bromure 2 chlorure 3 ferrocyanure 4 nitrite 5 nitrate 6 sulfate 7 azoture 8 oxalate 9 molybdate 10 tungstate 12 fluorure 13 tartrate 16 phosphate 17 citraconate 19 carbonate 20 acetate 24 propionate 26 crotonate 28 butyrate 31 valerate 33 caproate 37 gluconate minutes Figure 8.6 Un électrophorégramme. Séparation d’un mélange complexe d’anions. La non symétrie des pics souvent

de levures cultivées, - désulfitage, par procédé physique quelconque, - phosphatage à l'aide de phosphate de calcium ou de phosphate d'ammoniaque chimiquement pur en quantités nécessaires pour assurer l'activité des levures, - désacidification par tartrate neutre de potassium, carbonate de calcium, carbonate de potassium, - addition d'acide citrique, - addition d'acide tartrique pour acidification, - addition d'anhydride sulfureux SO2 libre maximal 450 mg SO2 total maximal 230 mg - addition de sulfate

cas d’ingestions répétées. Un contact oculaire prolongé peut entraîner une coloration brune de la conjonctive. Incompatibilités Avec soude, potasse et ammoniaque, l’acétate de plomb, les carbonates en solution, les sels d’or et d’argent, les tartrates de sodium et potassium, le borate de sodium. Mélangé avec du nitrate de sodium et de l’anhydride arsénieux, entraîne une inflammation spontanée. Dans des locaux frais, secs, ventilés, à l’abri de la chaleur et de la lumière, et à l’écart des produits

cochenille (insecte); E124 : rouge cochenille (extrait d’insecte); E160 : carotonoïde (pigment animal et végétal); E236 : acide formique (extrait du corps des fourmis); E237 : formiate de sodium; E238 : formiate de calcium; E334 : acide tartrique; E335 : tartrate de sodium; E336 : bitartrate de potassium; E337 : bitartrate de sodium et de potassium; E422 : glycérol; E471 : mono et dyglicérides d’acides gras; E472 : ester acétique, tartrique… E477 : monoester du propylène glycol des acides gras alimentaires

cochenille (insecte); E124 : rouge cochenille (extrait d’insecte); E160 : carotonoïde (pigment animal et végétal); E236 : acide formique (extrait du corps des fourmis); E237 : formiate de sodium; E238 : formiate de calcium; E334 : acide tartrique; E335 : tartrate de sodium; E336 : bitartrate de potassium; E337 : bitartrate de sodium et de potassium; E422 : glycérol; E471 : mono et dyglicérides d’acides gras; E472 : ester acétique, tartrique… E477 : monoester du propylène glycol des acides gras alimentaires

Muco-substances and polysaccharides were then stained with the help of a bismuth staining kit (Ref. #11436, Electron Microscopy Sciences), containing a solution A composed of periodic acid, ethanol and sodium acetate and a solution B composed of sodium tartrate, sodium hydroxide and bismuth subnitrate. Bismuth may effectively have applications in biofilm TEM studies, as it has previously been used to stain polysaccharides in fungi or bacteria extracellular tissues (Burton et al. 1975, Akashi et al. 1993)