Caenorhabditis elegans

phénomène d’excrétion directe sans biotransformation, respectivement du bromure de méthyle et du phosphure d’aluminium (Chaudry, 1997). Ce type de résistance est mal connu chez les insectes ; il est cependant intéressant de noter que chez Caenorhabditis elegans, un cas de résistance au vanadate et au thiabendazole est associé au gène SKS 1 (+) (Multi Drug Resistance). Celui-ci est surexprimé et la protéine, synthétisée, expulse rapidement le toxique hors du nématode (Usui et al., 1995). Ce type de

La fécondation 1.2.2. La segmentation (ou clivage) © Dunod. Toute reproduction non autorisée est un délit. VII 1 3 1.2.3. La gastrulation 10 1.2.4. L’organogenèse 14 Chapitre 2 – Développement d’un Nématode : Cænorhabditis elegans 17 2.1 L’œuf insegmenté 17 2.2 La segmentation 21 2.3 La gastrulation 21 2.4 L’organogenèse 24 Chapitre 3 – Développement d’une Annélide : Arenicola cristata 27 3.1 L’œuf insegmenté 27 3

transportent les acides aminés. S’ensuit la naissance d’un peptide qui sera éventuellement, après plusieurs étapes de maturation et d’assemblage, transformé en protéine. iv. les microARN (miARN) : découverts en 1993 par Victor Ambros chez le ver Caenorhabditis elegans. Ils possèdent une structure simple brin et sont longs de 19 à 25 nucléotides. Ils jouent un rôle dans le métabolisme cellulaire en empêchant la traduction de certains ARN messager en peptides. En se liant à des ARN messagers dont ils sont

symétrie radiaire) à un organisme complexe (pluricellulaire, souvent métamérisé, et construit en organes spécialisés). Elle utilise souvent des espèces modèles pour étudier les mécanismes de formation de l'organisme (la drosophile, le nématode Caenorhabditis elegans, le poisson zèbre, une plante du genre Arabidopsis) ; la génétique médicale étudie l'hérédité des maladies génétiques humaines, leur ségrégation dans les familles de malades. Elle cherche à identifier par ce biais les mutations responsables

laboratoires d'un facteur dix entre 1995 et la fin de 1997, et d'un nouveau facteur dix à la fin du siècle. 1996 : Séquençage du 1er génome eucaryote, Saccharomyces cerevisiae (12 Mb) (Dujon). 1998 : Séquençage du 1er organisme pluricellulaire, Caenorhabditis elegans (100 Mb) . 2000 : Séquençage du 1er génome de plante, Arabidopsis thaliana - ASCI White (RS/6000) : IBM construit le premier superordinateur qui dépasse les 10 TERAFLOPS ( dix mille milliards d'opérations par seconde). 2001 : Annonce du décryptage

queue de poly-A corrèle avec l’activation de la traduction chez les eucaryotes supérieurs. Le 3’UTR comporte donc le signal de polyadénylation mais aussi celui qui dicte la localisation subcellulaire des transcrits (Mignone et al., 2002). Chez Caenorhabditis elegans, une protéine (GLD) se lie également au 3’UTR et cause un raccourcissement de la queue de poly-A. Finalement, plusieurs facteurs qui se lient en 3’UTR des ARNm peuvent interagir avec ceux du 5’UTR et circulariser le transcrits. Cette circularisation

faisant partie du même précurseur, étaient liées ensembles (épissées) pour donner naissance au messager mature. Une autre forme d'épissage a été découverte chez des organismes tels les trypanosomes, certains protozoaires euglénoïdes et le ver Caenorhabditis elegans. Dans ce type d'épissage, l'un des exons, représentant la partie 5' de l'ARNm mature, est ajouté à un autre exon. La particularité réside dans le fait que ces deux exons proviennent de deux unités transcriptionnelles différentes, d'où le nom

de base 24 heures après la fin de l’exposition. Dans les mêmes conditions, un signal GSM-900 à 0,3 et 1,5 W/kg ne perturbait aucunement le niveau d’hsp27. De Pomerai et ses collègues en 2000 ont montré que chez des vers nématodes du genre caenorhabditis elegans, transfectés avec une construction comprenant un promoteur du gène Hsp16, une exposition de dix-huit heures à des radiofréquences de 750 MHz à 0,001 W/kg, augmentait l’express ion de cette protéine. Pour comparaison, l’amplitude de cette réponse

comme exemple les antiparasitaires internes, qui sont très utilisés en médecine bovine traditionnelle ou moderne. Les test in vitro sont difficiles à réaliser sur les helminthes parasites du tube digestif, ce sont donc des vers libres (souvent Caenorhabditis elegans) ou des œufs de parasites (récoltés sur animaux monoparasités) qui sont mis en contact de l’échantillon à testé (plante, extrait de plante ou principe isolé). Le nombre de vers ou de larves vivants en fonction du temps est relevé afin d’évaluer

Hox, mettant en place le plan d’organisation d’un embryon humain, étaient extrêmement proches de gènes jouant un rôle comparable chez un ensemble d’animaux et de végétaux. La souris côtoie ici la célèbre mouche drosophile, mais aussi Caenorhabditis elegans, petit ver devenu la coqueluche des biologistes, et même une plante à fleurs, Arabidopsis thaliana. Ainsi, merveille de l’unité du monde vivant, nous partageons ces gènes rescapés de l’évolution avec nos ancêtres communs d’il y a plus