Monocyte

hémobio TD 2 hémobio voir morphologies pathologiques des hématies ICI Normes physiologiques données en TD EMD2: Mercredi 08-12-10: La granulopoiëse (polycope) Dimanche 12-12-10: PnN PnB PnEo (polycope) Mercredi 15-12-10: Lymphocyte et monocyte version retappé Dimanche 16-01-11: La fibrinolyse Samedi 22-01-11: Physiologie du lympho..........Scan du cours de l'an dernier ici Mercredi 19-01-11: Les leucémies aigues Dimanche 23-01-11: Les leucémies aigues Mercredi 16-01-11: Les leucémies

des cellules souches multipotentes (cellules fœtales et adultes) capables de donner naissance à plusieurs types cellulaires, comme les cellules souches myéloïdes de la moelle osseuse qui sont à l'origine des cellules sanguines (érythrocytes, monocytes, granulocytes...) ; des cellules souches pluripotentes (cellules souches embryonnaires ou cellules souches pluripotentes induites), issues d'un embryon de 5 à 7 jours ou obtenues artificiellement après transformation de cellules adultes, qui

obtient normalement : G.neutrophiles LUC Lymphocytes G.éosinophiles Bruit de fond Monocytes Pour les réticulocytes, il y a deux colorations des acides nucléiques par l'oxazine 750. Pour les hématies, elles sont d'abord sphérisées sans modification de leur volume. Pour obtenir celui-ci, on mesure la diffraction du laser petit angle.

d’investigation. Pathogénie immunitaire Certaines constatations non spécifiques autorisent des hypothèses immunitaires dans l’ABR [64]. Il semblerait que l’ulcération aphteuse soit due à une action cytotoxique des lymphocytes T CD4+ et CD8+ et des monocytes, mais le facteur déclenchant de ces réactions n’est pas élucidé. Plusieurs anomalies concourent à cette hypothèse. Elles sont énumérées ciaprès. Les anomalies suivantes peuvent être constatées au niveau du sang périphérique, en association ou isolément

éosinophiles 0,2 à 0,85 0,2 à 1,2 0,05 à 0,7 0,02 à 0,65 0 à 0,6 0,1 à 0,4 Polynucléaires basophiles 0 à 0,64 0 à 0,2 0 à 0,2 0 à 0,2 0 à 0,2 0 à 0,2 Lymphocytes 2,0 à 11,0 2,0 à 11,0 4,0 à 10,5 2,0 à 8,0 1,5 à 6,5 1,0 à 4,5 Monocytes 0,4 à 3,1 0,05 à 1,1 0 à 0,8 0 à 0,8 0 à 0,8 0,2 à 1,0

Terminale | | |figurés du sang : érythrocytes, leucocytes et thrombocytes. | | | |On distinguera les granulocytes, les lymphocytes et les monocytes. | | | |(TP). | | |– Les examens biochimiques |A partir des résultats normaux

7,5 Polynucléaires éosinophiles 0,2 à 0,85 0,2 à 1,2 0,05 à 0,7 0,02 à 0,65 0 à 0,6 0,1 à 0,4 Polynucléaires basophiles 0 à 0,64 0 à 0,2 0 à 0,2 0 à 0,2 0 à 0,2 0 à 0,2 Lymphocytes 2,0 à 11,0 2,0 à 11,0 4,0 à 10,5 2,0 à 8,0 1,5 à 6,5 1,0 à 4,5 Monocytes 0,4 à 3,1 0,05 à 1,1 0 à 0,8 0 à 0,8 0 à 0,8 0,2 à 1,0 

des cellules gliales) Phénotype dépendant du microenvironnement Positionnée autour des vaisseaux sanguins ventricules et des Elara Moudilou SHS L1 2009-2010 81 Elara Moudilou SHS L1 2009-2010 82 Se différencient à partir de monocytes sanguins ayant franchis la BHE Surveillance immunologique du SNC Destruction des micro-organismes Elimination des débris cellulaires Elara Moudilou SHS L1 2009-2010 83 2.4.1- Microglie résidente Groupe principal sous forme amiboïde

éosinophiles 0,2 à 0,85 0,2 à 1,2 0,05 à 0,7 0,02 à 0,65 0 à 0,6 0,1 à 0,4 Polynucléaires basophiles 0 à 0,64 0 à 0,2 0 à 0,2 0 à 0,2 0 à 0,2 0 à 0,2 Lymphocytes 2,0 à 11,0 2,0 à 11,0 4,0 à 10,5 2,0 à 8,0 1,5 à 6,5 1,0 à 4,5 Monocytes 0,4 à 3,1 0,05 à 1,1 0 à 0,8 0 à 0,8 0 à 0,8 0,2 à 1,0

des bactéries intestinales. Ainsi, l’hyperactivation du système immunitaire entrave paradoxalement l’élimination du virus. Notre équipe a montré que cette hyperactivation pourrait reposer sur une population particulière de globules blancs, des monocytes porteurs de la molécule MDC-8. Ceux-ci pourraient devenir une nouvelle cible thérapeutique. Cette stratégie permettrait de compléter l’action des antirétroviraux en interrompant d’une manière très ciblée le cercle vicieux d’hyperactivation du système