Artemia salina

charadriiformes breeding in the Camargue, Southern France. Colonial Waterbirds 19 (Special Publication 1): 46-58. Sadoul, N. & J. G. Walmsley. 2000. Salinas and nature conservation in the Mediterranean. In “8th World Salt Symposium, vol. 2” (ed. R.M. Geertman), 7-11 May 2000, The Hague, The Netherlands. 1400 p. Sadoul, N. Walmsley, J. G. and B. Charpentier. 1998. Salinas and nature conservation. Conservation des zones humides méditerranéennes (eds. J. Skinner et A. J. Crivelli), n° 9, Tour du Valat, Arles,

permis d’établir une corrélation avec les paramètres de numération employés habituellement, sauf dans le cas particulier de Mycrocystes. Il y a là probablement une avancée technique très intéressante. En revanche l’utilisation d’un bioessai sur Artemia salina (petit invertébré) afin de détecter la toxicité n’a pas montré une spécificité satisfaisante pour remplacer les tests analytiques classiques. Un autre projet (Iteman I et al., 1999) a permis le développement d’outils moléculaires pour l’identification

les bioessais sur invertébrés ne sont ni validés, ni intercalibrés pour la recherche et la quantification d’une ou plusieurs cyanotoxines. Parmi les bioessais sur invertébrés permettant de mettre en évidence une toxicité globale, le bioessai sur Artemia salina est le plus utilisé à ce jour car il ne nécessite pas de haute technicité, ni humaine ni matérielle. Des kits commerciaux standardisés sont aujourd’hui disponibles. Toutefois, la détection de faibles concentrations de cyanotoxines nécessite la

un foyer précancéreux hépatique confirmant le potentiel cancérogène du B(a)P et des polluants organiques présents dans les sédiments de l’estuaire de Seine (Cachot et al, 2007). Les premières données obtenues font apparaître que les nauplii d’A. salina exposés au BaP accumulent des quantités très élevées de ce composé qui peuvent aller jusqu’à plusieurs centaines de milliers de ng.g-1 (plus de 250 000 ng.g-1 ps). Ces mêmes nauplii exposés à l’extrait organique de sédiment de Seine accumulent des

sont toxiques chez l‟animal. Chez la souris, la DL50 (Dose Létale médiane) de l‟extrait d‟Aloe vera est de 120,65 mg/kg. Parmi 21 plantes testées lors de l‟estimation de la DL50, l‟Aloe vera a été la plus toxique. Les tests in vitro sur des larves Artémias ont confirmé les tests de toxicité in vivo chez la souris [111]. Contrairement à l‟extrait, le gel d‟Aloe vera lyophilisé n‟a montré aucun effet toxique lorsqu‟il a été administré par voie orale à des rats albinos à des doses de 1, 4, 16 ou 64 mg/kg

pour homogénéiser. 10 1. Le soluté est le chlorure de sodium, le solvant est l’eau. 2. La concentration massique en ion chlorure est : t(Cl–) = C(Cl–) × M(Cl) = 1,52 × 35,5 = 54,0 g · L–1. 3. Cette eau est favorable au développement des Artémia salina, car t(Cl–) > 30 g · L–1. 11 1. La masse msol de 100 mL de solution d’éosine est : msol = ρsol × Vsol = 1,0 × 100 = 1,0 × 102 g. La masse volumique est donnée en g · mL–1, le volume utilisé pour le calcul doit donc être en mL. 2. Un

durée de cette résorption est fonction de la température de l’eau. Plus la température est élevée, plus la durée diminue. De 3 à 4 mg jusqu’à 30 mg, les larves sont nourries avec des nauplii d’Artemia salina (aliment de pisciculture, le nauplii étant le stade de développement du crustacé Artemia) et de 30 à 250 mg avec du Trouvit (aliment français pour truites). Cette alimentation peut non seulement permettre une croissance rapide mais aussi limiter le taux de mortalité souvent dû à la prédation