Bioréacteur

de multiplication végétative ou de reproduction. Biofilms : communauté plus ou moins complexe et symbiotique de micro-organismes, adhérant entre eux et à une surface, et marquée par la sécrétion d'une matrice adhésive et protectrice. Bioréacteurs : Un bioréacteur, appelé également fermenteur ou propagateur, est une unité technologique dans laquelle on multiplie des micro-organismes tant pour la production de biomasse en soi, que pour la production d'un métabolite ou encore la bioconversion d'une

Introduction Un bioréacteur, appelé également fermenteur ou propagateur, est un appareil dans lequel on multiplie des micro-organismes (levures, bactéries, champignons microscopiques, algues, cellules animales et végétales) pour la production de biomasse, ou pour la production d'un métabolite ou encore la bioconversion d'une molécule d'intérêt. Contrairement aux systèmes plus simples utilisés pour faire pousser des micro-organismes, comme par exemples les fioles, le bioréacteur permet de contrôler

réaliser une multiplication microbienne pour la production d'un métabolite, pour Raouftella terragina ça sera des exopolysaccharides: E.P.S dans un bioréacteur de volume utile égal à 2 litres. Nous allons faire une cascade de sub-cultures depuis la boite de pétri en préparant des milieux de cultures stériles en fiole d'erlenmeyer et en bioréacteur. La production des E.P.S intègre deux phases distinctes : - La fermentation - Les traitements de la biomasse en vue du conditionnement. Les

Placer les sondes (à O2 et à CO2) et l'agitateur dans la cuve puis faire tourner l'agitateur : ne pas toucher les sondes avec les doigts ! L'agitateur ne doit pas toucher les sondes ! Introduire 12 mL d'une suspension de levures dans la cuve du bioréacteur à l'aide de la pipette. Ouvrir les volets et Vérifier que les sondes soient bien dans la suspension de levures et qu'elles ne touchent pas le fond de la cuve ! Régler l'ordinateur : lancer le logiciel SERENIS. Ouvrir la fenêtre Paramétrage

……………………………………………………………………………………………………………………… 1.2. Phases et mise à l’échelle d’une fermentation ………………………………………………………………………… 1.3. Différents procédés de fermentation …………………………………………………………………………………… 1.4. Exemples de modèles de bioréacteurs …………………………………………………………………………………… ParTie 1. aspects technologiques 1. Procédés de fermentation et bioréacteurs ……………………………………………………………………… 10 10 10 12 20 2.1. Milieux de culture pour les fermentations industrielles …………………………………………………………… 20 2.2. stérilisation du milieu de culture et des composés

catalyse enzymatique : 1- Expérience : Matériel : -logiciel EXAO -bioréacteur -sonde à oxygène -substrat (solution de glucose) à différentes concentrations -enzyme (glucose oxydase) Protocole expérimental : -Placer la cuve dans le bioréacteur. -Remplir la cuve du bioréacteur avec la solution dans laquelle les mesures doivent être réalisées. -Placer le turbulent dans la cuve. -Fermer le bioréacteur avec le couvercle. -Placer la sonde à oxygène dans une des ouvertures du couvercle

aquariophilie. Méthode : Lors de notre expérience nous utiliserons un système appelé ExAO qui permet de mesurer des concentrations, dans notre cas le CO2. Tout d’abord, nous plaçons la plante Cabomba coupée très finement (environ 0.400 g) dans le bioréacteur en y ajoutant une solution tamponnée de bicarbonate (environ 12.5 mL) pour que le pH reste constant. Pour réaliser une solution tamponnée de bicarbonate, on prend ¾ de solution tampon + ¼ de bicarbonate à 0,5%. Tout d’abord pour la solution

SOMMAIRE : Intro I. Observations II. Principes III. Matériel 1) Rhizobium meliloti 2) Milieu de culture 3) Présentation de l’autoclave 4) Présentation du bioréacteur 5) Le spectrophotomètre 6) Lame de Malassez 7) Le pH-mètre IV. Méthodes 1) Turbidimétrie 2) Lame de Malassez 3) Le dosage au DNS V. Suivi de croissance et production d’exopolysaccharides 1) Mercredi 2) Jeudi 3) Vendredi 4) Calcul matière sèche 5) Dosage

selon la quantité de lumière . Protocole : Lors de l’expérience on utilisera le logiciel de mesure Exao équipé d’un bioreacteur, d’une sonde à O2 et d’une sonde de Lux connectés à l’ordinateur, cela nous donneras des informations sur la quantité d’O2 et de Lux présente dans le bioreacteur. Notre cellule chlorophillienne sera representé par l’élodée (une algue). Dans un bioreacteur on met des feuilles d’élodée finement coupées submergées dans l’eau, on entre dans le logiciel Serenis et on commence

Bioréacteur : Les étapes de fabrication de l’acide succinique se fait dans des bioréacteurs de très grandes tailles. En moyenne les industrielles possèdent des bioréacteurs d’environ 350'000 L, certain, les plus gros font jusqu’à 900'000 L. 2 bactéries: Actuellement les recherches pour développer la production d’acide succinique se portent sur l’emploi de champignon. Mais surtout des bactéries telle que Anaerobiospirillum succiniciproducens et Actinobacillus succinogenes 130Z. Anaerobiospirillum