Milieu de culture

 TD 1 : Caractérisation bactérienne. Un milieu de culture est souvent ordinaire. Il y a exception avec composants différents pour certaines bactéries dites exigeantes. Milieu de culture ordinaire contient : Une base minérale : (Potassium, Sodium etc.) Macroélément ionique Microélément ionique appelé oligoélément Source d’énergie Source de carbone tel que CO2 ou glucose  Source d’azote inorganique (acides aminés, bases azotés, digestion de protéine animale ou végétale appelé hydrolysat, extrait

différentes de nutrition et d’éclairement pendant 24 heures. L’aspect et la croissance des euglènes sont observés. Le tableau ci-dessous résume ces conditions et les résultats observés. |Milieu |Composition du milieu de culture |Conditions d’éclairement |Evolution de la culture | | |eau |lumière |Accroissement de la population des euglènes

microbiologie. Il faut connaître le matériel nécessaire à la culture des procaryotes afin de réaliser un travail rigoureux. Pour les manipulations, il faut connaître les manipulations des autoclaves et du spectrophotomètre. Toutes ces techniques sont fréquemment utilisées dans les laboratoires. Dans ce rapport, nous nous sommes intéressés a la bactérie Escherichia Coli. Les travaux réalisés vont de la fabrication du milieu de culture à l'observation des résultats obtenus par le biais de deux méthodes

SOMMAIRE : Intro I. Observations II. Principes III. Matériel 1) Rhizobium meliloti 2) Milieu de culture 3) Présentation de l’autoclave 4) Présentation du bioréacteur 5) Le spectrophotomètre 6) Lame de Malassez 7) Le pH-mètre IV. Méthodes 1) Turbidimétrie 2) Lame de Malassez 3) Le dosage au DNS V. Suivi de croissance et production d’exopolysaccharides 1) Mercredi 2) Jeudi 3) Vendredi 4) Calcul matière sèche 5) Dosage

MILIEUX DE CULTURE Introduction Un milieu de culture doit satisfaire à toutes les exigences nutritives des micro-organismes : - apport de la source d'énergie, de carbone, d'azote; - besoins en ions minéraux, en facteurs de croissance; - pH et force ionique voisins des valeurs optimum. Il peut se présenter sous forme liquide ou solide, par addition : d'aqar ou gélose (intérêt : fusion au delà de 80°C, mais possibilité de le maintenir en surfusion à 45°C, température compatible avec l'incorporation

plasmide est co-transfecté dans des cellules intestinales avec un plasmide codant les facteurs USF ou MYC. 24h après transfection, l’activité luciférase est analysée (figure 2). -C) immuno-précipitation de chromatine (figure 3). Des cellules en culture sont traitées par la formaldéhyde (induit un pontage covalent ADN-protéines). La chromatine est alors isolée et immunoprécipitée avec des anticorps antiMYC, anti-USF ou anti-histone H4 acétylée. L’ADN est extrait de la chromatine immunoprécipitée

Rapport de microbiologie de l’environnement 1. Introduction Lors de ces travaux pratiques, nous avons réalisé 2 expériences. L’une était d’ensemencer divers milieux de cultures avec différents extraits de sols afin d’observer la biodiversité des microorganismes présents dans ces extraits. La seconde manipulation consistait en l’analyse de la diversité métabolique des microorganismes par la méthode sur ecoplates (Community-Level-Physiological-Profiling). 2.2. But de l’étalement

C o m p t e -­‐ R e n d u   B a c t é r i o l o g i e   Préparé  par  :  Matar  Rayan,  Mayet  Anaïs       Date  :  10/04/15   UPJV            Culture  numéro  6       1- Bouillon A6 : 2.1- Jour 1 : Examen à l’état frais : L’observation microscopique, grandissement 40 et luminosité moyenne, nous montre des bactéries de forme bacillaire dotée de mouvement (flagelles). Examen avec coloration de Gram: Après coloration de gramme, on observe

du dioxygène comporte au bout de quelques jours de culture beaucoup plus de levure que la boîte n’en ayant pas. Nous pouvons alors dire que le dioxygène est favorable à la production de levure mais défavorable à celle de l’éthanol. En effet dans le document 2 nous avons une expérience nous montrant les effets du dioxygène sur la quantité d’éthanol produite par les levures et sur le rendement de la culture. Nous pouvons alors voir que la culture en contact avec le dioxygène ne produit que quelques

placé en culture des cellules meristematiques de racines d’oignons dans un milieu contenant de la timide marquée T* à l’azote. Au bout de la première décision dans le milieu radioactif, Taylor a obtenu 100% de cellules radioactives (contenant de la cellule marquée). Ces même cellules sont placés dans un milieu normal c’est à dire contenant de la thymine non radioactive, au bout de la deuxième division, il obtient 50% de cellules non radioactives et 50% des cellules radioactives. 1e milieu de culture :