Milieu de culture

Milieu Chapman Mannité C'est un milieu sélectif pour la culture des staphylocoques. La teneur élevé en sel inhibe la plupart des autres bactéries à l'exception de certains germes marins. Ce milieu peut également mettre en évidence la fermentation du mannitol. Examen macroscopique Taille: > 2mm Aspect des bords: réguliers Relief: semi-bombé Aspect de la surface: lisse et brillante de type S Comportement à la lumière: transparente Couleur: jaune On observe que le milieu est devenu

permet de suivre en temps réel la croissance de la biomasse bactérienne dans les milieux de culture translucides. L'interprétation de la courbe de croissance obtenue par spectrophotométrie n'est cependant pas immédiate pour deux raisons : la DO permet de mesurer la biomasse de la culture et non directement sa concentration en cellules viables et cette densité n'est mesurable que lorsque la concentration de la culture atteint un certain seuil qui varie de 105 à 107 cellules par mL en fonction du micro-organisme

technique qui permette d’étudier l’évolution de la population bactérienne en fonction du temps. 2. La souche d’Acetobacter est cultivée dans un milieu liquide contenant les substrats appropriés et de l’acide para-aminobenzoïque (PAB), indispensable à cette bactérie. Le tableau ci-dessous donne le nombre de bactéries par unités de volume (N) à différents temps de culture : t (h) N 0 105 1 105 2 105 3 105 4 1,38 105 5 2,51 105 6 5,75 105 7 1,32 106 8 3,02 106 9 6,92 106 10 1,51 107 11 2,51 107 12 3,63 107

Sur la photographie n°2 nous pouvons constater qu’après 3 jours dans un milieu de culture contenant de l’AMH , Le canal de Müller a totalement disparut . Or nous savons que : -L’AMH détruit les canaux de Müller - La différentiation de sexe phénotypique se passe entre la 8° et la 10° semaine Ici, l’embryon n’a que 14 jours au début de l’expérience, soit 2 semaines, et 3 jours après s’etre développé dans un milieu de culture auquel on avait ajouté de l’AMH, 3 jours ont suffit pour faire disparaitre

La gélose est une substance nutritive favorisant ou inhibant (selon sa composition) la prolifération et le développement des bactéries. Il s'agit donc du milieu de culture des bactéries. Elle est utilisée dans les laboratoires pour déterminer le niveau d'efficacité de nouveaux antibiotiques, tester la résistance bactérienne vis-à-vis de produits déjà connus, ou plus simplement, pour isoler ou cultiver des bactéries. La gélose se différencie du bouillon, la plupart du temps de bouillon de bœuf,

quantitées de dioxygène dans les différents milieux de culture des différentes levures. 6. Le document 3 nous montre que les levures sauvages n'utilisent pas de dioxygène pour réaliser leur métabolisme puisqu'il y'a moins d'1 mg/L au bout de 6 min ; alors que les levures mutantes utilisent du dioxygène pour réaliser leur mutation puisque la quantité de dioxygène présente dans le mileu de leur culture est presque semblable a celle présente dans le milieu A de référence. 7. Le patrimoine génétique

Type de culture: La production d’acide succinique peut se faire par le biais des 3 types de cultures : Culture discontinue ou batch : ce procédé est simple, il suffit d’inoculer un type de bactérie dans un milieu nutritif, le volume de ce milieu de culture est fixe, la réaction va donc s’arrêter après l’utilisation de tout le milieu. | Anaerobiospirillum succiniciproducens | Actinobacillus succinogenes 130Z | rendement | 93 % | 57 % | production | 0.24 g/L/h | 0.58 g/L/h | Culture discontinue

…………………………………………………………………………………….  1.1. Prélèvement d’échantillon et préparation des dilutions décimales ………………………………….  1.2. Milieux d’isolement ……………………………………………………………....................................... 1.3. Récolte des actinomycètes et purification……………………………………………………………… 2. Observation microscopique des actinomycètes on utilisant la méthode culture sur lamelle………. 3. Mise en évidence de la capacité des bactéries à dégrader certains composés de synthèse …………………………………………………………………………………………………………………

préparer des filtrats comprenant le milieu de culture des bactéries cassées et des fractions membranaires. Ce protocole est adapté à un méta génome utilisant E.coli comme réceptrice et un fosmide exprimant la résistance au chloramphénicol. Il est appliqué sur des clones conservés à -80°C en plaques 96 puits.. I-2. Protocole - Réaliser 4 pré cultures de chaque plaque initiale dans 150 ml de milieu 2YT en présence de chloramphénicol 12mg/ml. NB. La pré culture s’avère nécessaire pour obtenir des

TD2 : BACTERIOLOGIE Contamination de jus d’orange Identification de la bactérie en faisant une culture en milieu pure Les bactéries présents majoritairement dans les contaminants sont des hétérotrophes (organisme utilisant les substrats organiques comme source de carbone), ils vont utiliser les sucres présents dans le milieu. Les autotrophes photolithotrophes: Source de C : autotrophes : donc CO2 Source d'énergie: phototrophe : donc lumière (donc photosynthétiques) Source d'e- : lithotrophes