Pipette

PBS sans Ca2+ et Mg2+ préchauffé à 37°C • Solution de trypsine/EDTA préchauffée à 37°C • Milieu complet de DMEM/F12 avec sérums de cheval à 5% (v/v) et FBS à 2.5% (v/v) • Pipettes stériles de 5 mL • Embouts longs de 1000 μL stériles • Incubateur à CO2 à 37 ° C • Flacon de 25 cm2 (T25) • Microscope inversé à contraste de

unknown bacteria. Method: (as shown in module handbook pages 14-17) Experiment 1 Part (a) Agar Depth Pipette 10, 20 & 30ml of agar into 3 plates then 20ml into a fourth plate and leave it at a slope. Prepare a 1 in 20 dilution of E.Coli 10418 using peptone water whilst the agar sets, then inoculate the plates with a sterile swab. Lay 4 sterile discs on each plate using forceps and pipette 20µl of 0.5mg/ml ampicillin onto each disc. Part (b) Inoculum Size Pour two 20ml bottles of agar into

trouver une solution à ce problème, vous devez être en mesure de réaliser les manipulations proposées avec soin. Vous ne devez pas en échapper et laisser le moins de produit coller aux parois des récipients. Matériel - 1 balance électronique - 2 pipettes graduées jetables - 1 spatule - 1 tige de verre - Papier essuie-tout - 2 cylindres gradués de 100 ml - Éthanol dénaturé - Eau distillée - Gravier But : Se familiariser avec l’utilisation de certains instruments de laboratoire. Réaliser

nettoyant (ici « St Marc Multi-Usages »), une petite coupelle ou petit récipient, une pipette. - Nettoyer la surface choisie avec le produit nettoyant, bien la sécher, et la poser sur le plan de travail. - Nettoyer la pipette au produit nettoyant puis à la solution choisie. - Nettoyer la coupelle au produit nettoyant puis à la solution choisie. - Remplir la coupelle de la solution. - A l’aide de la pipette déposer une goutte de la solution sur la surface. - Prendre une photo. - Essuyer la

d’étalonnage (d’après la loi de Beer-Lambert : A = k.C). Protocole Liste de matériel· Deux fioles jaugées de 20 ml · Deux béchers · 11 tubes à essaie · 11 cuves· Une micropipette de 1000 μm· Des cônes pour la micropipette · Une pipette graduée de 2ml · Une poire à pipeter · Un bain-marie à 37°C· Un récipient rempli de glace · De l’eau distilléePréparation des solutions / Établir une gamme d'étalonnageOn dispose d’une solution-mère à 1 g.L-1. A partir de celle-ci, on préparer une solution-fille de

1.8 × 10−8 ������������. ����−1 On observe un précipité blanc de chlorure d’argent (AgCl). L’équation de la 1.0×10 −2 10 −9.75 Deuxième expérience : Dans un tube à essais, verser 1mL d’eau distillé, une goutte de chromates (prendre une pipette et puis la laisser dans le flacon pour la prochaine utilisation) quelques gouttes de chromates de potassium. On observe un précipité rouge de chromate d’argent��������2 ������������4 . L’équation de la 2− réaction est 2 ��������+(�������� ) + ������������4

volume prélevé Vm est imposé par la pipette jaugée disponible, alors on en déduit la concentration de la solution fille : 𝑐𝑓 = 𝑐𝑚×𝑉𝑚 𝑉𝑓 • Dans le cas du TP, les pipettes sont imposées (5, 10 et 20 mL) donc on en déduit les concentrations des solutions préparées. 2. Protocole de dilution • placer la solution mère S1 dans un bécher • prélever un volume Vmère de solution S1 avec une pipette jaugée de volume Vmère. • le verser

forme un précipité rouge en présence de sucres réducteurs comme le glucose. Pour préparer le tube témoin, n°1, nous avons utilisés des pipettes graduées pour prélever 10 ml d’amidon, 0.4ml d’eau à l’aide d’une pipette pasteur avec un ph de 7 (pas d’acidité) Pour le tube expérience n°2, nous avons mit 10ml d’amidon, 0.4ml d’amylase a l’aide d’une autre pipette graduée avec toujours un ph de 7. Le tube expérience n°3, mettre 10ml d’amidon 0.4ml d’amylase et un ph cette fois ci de 4 (c’est-à-dire

veineux et 1 volume d anticoagulant ; -Pipette de Westergreen : longueur 300mm/2,5mm diamètre intérieur, graduée en mm de 0 à 200 de haut en bas -Support adapté aux pipettes pour les maintenir en position verticale Technique -Aspirer le mélange solution anticoagulante-sang, bien homogénéisé, dans la pipette de Westergreen, jusqu au trait 0 -placer aussitôt la pipette sur le support en position strictement verticale Actuellement, il est commercialisé des pipettes munies d un système individuel de remplissage

matériel mis à disposition, propose un protocole expérimental montrant le rôle de l’amylase dans l’hydrolyse de l’amidon. Faire vérifier par le professeur Ressources   : Matériel   : Tout le matériel pour faire des solutions : tubes à essai- pipettes, agitateur, bécher.….. Solution d’amidon Solution d’amylase proche de l’amylase produite par les glandes salivaires Liqueur de Fehling Eau iodée Porte-tube Un feutre Une pince en bois Plaque de coloration Chauffe tube Pissette d’eau distillée Document :