Acétonitrile

fortement l'usage, exclure le tétrachlorure de carbone, si nécessaire utiliser le dichlorométhane # esters : l'acétate d'éthyle est un bon solvant d'extraction # éthers : éviter les éthers cycliques # cétones : préférer l'acétone, peu toxique # amides, acétonitrile, DMSO, HMPT : pas trop toxiques si ils sont utilisés correctement, préférer le DMSO non toxique # alcools : attention à la toxicité du méthanol. * Au laboratoire, si on évite les composés très toxiques il est possible d'utiliser les autres avec

typeSHIMADZU. La colonne est de dimension 4,6 mm×250 mm et son modèle est Eurospher 100-5 C18 de type vertex. La température est maintenue à 25°C et le débit est de 1,2 ml min-1. L’élution s’effectue en 8min et la phase mobile utilisée est la solution Acétonitrile : Eau (45 : 55). La longueur d’onde utilisée est de 254 nm. Matériel utilisé : balance, HPCL, fioles jaugées, spatule, micropipette, écouvillon, compresse et centrifugeuse. Réactifs utilisés : Isopropanol, eau purifiée, acétonirile, triamcinolone

d’acétonitrile dans l’éluant pour l’optimiser. L’acétonitrile a pour but de diminuer grandement le temps de rétention (temps que met l’espèce à traverser la colonne) du ??2 ? −. Par contre la colonne que nous utilisons au LEPMI ne supporte que 10% en acétonitrile. (2). La colonne utilisée dans leur étude est 5 fois plus courte que la nôtre (mais il utilise la même fournisseur), le temps de rétention y est encore réduit. (3). Dans toutes les recherches faites, rien n’indique que la taille de cet ion influence

(solution standard), o Pectenotoxine-6 (PTX6) (C47H68O16) (solution standard), o Chloroforme (CHCl3) (Grade analytique), o Dichlorométhane (CH2 Cl2 ) (Grade analytique), o Hexane (C6H14) (Grade analytique), o Méthanol (CH4O) (Grade analytique), o Acétonitrile (C2H3N) (Grade HPLC), o Méthanol (CH4O) (Grade HPLC), o Acide acétique (C2H4O2) (98-100%)(Grade analytique), o Acide chlorhydrique (HCl) (Grade analytique), o Hydroxyde de sodium (NaOH) (Grade analytique), o Eau déionisé (H2O). - Solutions : o

254 ou 276 nm. La phase stationnaire est constituée de silice greffé sur une chaine linéaire de 18 carbones (on parle de colonne en C18). La phase mobile quant à elle a la composition suivante : eau/tétrahydrofurane (100 : 0,8, v/v) ou bien eau/acétonitrile (90 : 10, v/v). Ce protocole analytique permet en particulier de bien séparer la patuline d’une interférence fréquemment rencontrée dans les jus à base de pommes : le 5-(hydroxyméthyl) furfural (HMF) Ainsi, les différentes petites molécules seront

Preparation of arabinose [pic] Figure 11: Overview of the preparation of arabinose For this preparation, I should protect the anomeric hydroxyl group by a methyl. After, I was able to add the benzyl group. Then, I could add the trichloro acetonitrile. • First reaction: [pic] Figure 12: Mechanism of the methylation reaction I had to protect the anomeric hydroxyl group. In this reaction, I used acetyl chloride in methanol to produce some HCl. The latter served in the reaction

halogénure d’aryle et un amine. Elle se fait en présence d’une base et d’un catalyseur au palladium. Réactifs de départ 2-chloro-4-phénylpyrimidine (1ère et 3ème réactions) : 176 mg (M = 283)  0.926 mmol Palladium Tetrakis : (20 mol%)  214 mg Acétonitrile : 5 mL Aniline : (2éq)  1.852 mmol  0.172 mL Carbonate de sodium : 0.926 mmol (M = 106)  196 mg Mode opératoire : Placer dans un ballon 176 mg de 2-chloro-4-phénylpyrimidine, 214 mg de palladium Tetrakis, 5 mL d’ACN, 0.172 mL d’aniline et 196

pour qu’il n’y ait pas de bulles d’air dans la colonne ce qui pourrait fausser les résultats. *Pour les ROH, ROOH et RO l’éluant utilisé sera un tampon phosphate de NH4, 20 mM, à pH 2.5 qui constituera 35% du mélange de l’éluant et un mélange Acétonitrile (60%)/Tetrahydrofurane (5%) *Pour AL la phase mobile est constituée de MeOH avec 0,1 % de CH3COOH Elles constitueront la phase polaire de notre chromatographie. -Pompe : Réglable en débit et en pression. La pression va permettre une meilleure

NRC Canada Determination of residual TNT and its metabolites by high-performance liquid chromatography (HPLC) The HPLC analysis was made as previously described (Hawari et al. 1998). Aliquots of 1 mL from the culture were mixed with 1 mL of acetonitrile, then filtered and analyzed by using a Waters HPLC system fitted with a Waters pump (Waters Chromatography Division, Milford, Mass.) and connected to a WISP auto injector. Samples (50 µL) from the filtered culture media were injected into a Supelco

to octadecylsilyl (ODS) columns for the separation of hydrophilic compounds. Elution profiles of glucobioses with acetonitrile-water (4:96) at 15°C were presented by Koizumi et al. [1996]. Three configurational isomers of trehalose, trehalose (α,α-linked), isotrehalose (β, β -1inked) and neotrehalose (α, β -1inked), were also well resolved from each other on this column with acetonitrile-water (3:97) [Koizumi et al., 1992]. The elution order of glucobioses [α,α-(1,1), β,β-(1,1), α,β-(1,1), α-(1,6)