Chromatographie préparative

vous sélectionnez les clones recombinants. ! Préparation de l'insert: Extraction d'ADN génomique de la bactérie. Digestion partielle de cet ADN par l'enzyme de restriction Eco RI, de manière à générer des fragments de 5 à 10 kb. Electrophorèse préparative pour purifier sur gel les fragments de 5 à 10 kb. ! Préparation du vecteur: Digestion complète de pBR330 par Eco RI. Déphosphorylation des extrémités. ! Clonage: ligature des inserts et des vecteurs. Transformation de cellules d'E. coli. Recommencer

3.2.4 Acide et bases 3.3 Unités propres à la chimie 3.3.1 Mole 3.4 Chimie organique 3.4.1 Polymères 3.5 Chimie expérimentale 3.5.1 Extraction 3.5.2 Synthèse chimique et chimie préparative 3.5.3 Analyse et caractérisation 3.5.4 Purification 3.5.5 Règles de sécurité en chimie expérimentale 3.6 Lois chimiques 4 Quelques personnalités de la chimie et de la physico-chimie 5 Enseignement

et Maintenance ………….page 8 Logigramme des opérations liées au conditionnement Préparation du Conditionnement Création de la fiche suiveuse de conditionnement Les étiquettes Les notices Conditionnement des supports de chromatographie Consignes de sécurité Matériels Répartition du support Conditionnements inférieurs à 100mL Conditionnements supérieurs (ou égaux) à 100mL des supports organiques et minéraux Conditionnements supérieurs (ou égaux) à 1L des supports

Purification des recombinants de l’OVAX----- P14 II.1.A. Préparation préliminaire des solutions tampons----------- P14 II.1.B. Purification par chromatographie d’exclusion HR100 -----P15 II.1.C. Purification par chromatographie d’échange d’anions (QSépharose)----------------------------------------------------------------- P17 II.1.D. Purification par chromatographie d’affinité (héparine sépharose)----------------------------------------------------------------- P19 2 II.2. Analyse par électrophorèse

l’électrophorégramme obtenu avec la solution à examiner (b) présente une bande large unique semblable, quant à sa position et son intensité, à la bande unique de l’électrophorégramme obtenu avec la solution témoin (b). D. Cartographie peptidique (2.2.55). Chromatographie liquide (2.2.29). Solution à examiner. Diluez la préparation à examiner avec de la solution tampon tris-acétate pH 8,5 R de façon à obtenir une concentration de 1,0 mg/mL. Equilibrez la solution avec la solution tampon tris-acétate pH 8,5

TP de BIOCHIMIE – Licence BB L2 S4B0700 TP. III. Chromatographie sur résine échangeuse d’ions T.P. III. CHROMATOGRAPHIE SUR RESINE ECHANGEUSE D'IONS But et principe La phase stationnaire est constituée par une substance poreuse portant des groupes ionisables acides ou basiques. La phase mobile est une solution aqueuse de sels neutres, ou de sels à pouvoir tampon ou d'acides ou de bases. Les substances ionisables soumises à la chromatographie se répartissent entre les 2 phases selon les lois

s'accumule dans le système nerveux central et qui est très toxique[1]. Ce dernier peut être dosé dans les urines pour déceler une eventuelle intoxication[2]. L'hexane est en conséquence couramment remplacé par le cyclohexane, notamment pour la chromatographie préparative. Si l'usage de l'hexane est préféré, il convient de se protéger efficacement, en particulier grâce à des hottes aspirantes. Structure et représentation de l’ hexane [pic] |Formule brute

quantitative. Nous allons doser les conservateurs (DMDM) et parabène par HPLC, chromatographie en phase liquide haute performance, afin de déterminer la concentration de ce conservateur, en tant que matière première, dans le produit fini (échantillon). ➢ Définition : La chromatographie en phase liquide à haute performance « HPLC » est une technique de séparation analytique en fonction de l’hydrophobicité et préparative des molécules d’un composé ou un mélange de composés.

etc.) - Principales applications en Biochimie Clinique. 1.6 Méthodes chromatographiques 1.6.1 Chromatographie d'adsorption et de partage (colonne, couche mince) Principes - Conditions d'appareillage - Principales applications en Biochimie Clinique. 1.6.2 Chromatographie en phase gazeuse (CPG) - Principes - Conditions d'appareillage - Principales applications en Biochimie Clinique. 1.6.3 chromatographie liquide à haute performance (HPLC) - Principes – Conditions d'appareillage - Principales applications

indéfiniment: hybridome. Chaque hybridome sécrète un anticorps monoclonal de spécificité très étroite. Ces réactifs ont permis la localisation des protéines dans les tissus (immuno-histochimie ou immuno-fluorescence), la purification des protéines par chromatographie d’affinité ou la mise en évidence de l’interaction entre les protéines (immuno-précipitation). Certains anticorps monoclonaux humanisés (site de reconnaissance d’origine murine + reste de l’anticorps d’origine humaine) sont utilisés en thérapeutique