Silice

 liquide­gel; perméation;  size exclusion) C.Ionique                    Polymère organique réticulé greffé  Echange d'ions C.Affinité                     Support greffé porteur d'ions (IMAC)             Liaison donneur­accepteur ElectroC                       gel de silice ou polymère organ. greffé            Mobilité ds champ électr. 2. Grandeurs chromatographiques   2.1 Rapport de distribution K du soluté (rappel:  soluté= corps minoritaire dans un solvant;  corps simple = entité moléculaire formée  d'atomes identiques: ex

ampoule à décanter et ajouter 10 ml d'eau, agiter et laisser décanter. Maintenant nous voulons savoir si après tous sa l'anéthol a bien été extraite de l'anis étoilé. Pour effectuer cette vérification nous avons besoin d'une plaque recouverte de gel de silice et d'un éluant qui est appeler le dichlorométhane. Nous disposons 2 dépôts sur la plaque celle de l'extraction et l'autre de l'anéthol pure. Ce principe s'appelle la Chromatographie, mais étant incolore il faudra passer la plaque sous les uv et tracés

éthanoïque et quelques grains de pierre ponce. - Chauffer à reflux. - Réaction : anhydride éthanoïque + alcool benzylique  acide éthanoïque + éthanoate de benzyle Document n°2 : Réalisation d’une CCM - Phase stationnaire: gel de silice - Éluant: mélange éthanoate d'éthyle/cyclohexane (1 / 3) - Révélation: UV - Solvant: cyclohexane Document n°3: Données concernant les espèces chimiques mises en jeu Anhydride éthanoïque M = 102 g.mol-1 d = 1,08 Teb = 139°C soluble

méthanol. Ensuite nous avons effectué deux chromatographies sur couche mince dans le but d’identifier les lipides extraits à l’aide de deux sortes de solvant plus ou moins polaires. Les échantillons de jaune d’œuf sont déposés sur la plaque en gel de silice. Ils seront par la suite analysés et identifiés en étant comparés aux échantillons de lipides témoins. Cette identification est possible grâce aux calculs de rapports frontaux. Principe : La première étape de cette expérience débute par l’extraction

technique de séparation de composants dans un but d'analyse qui repose essentiellement sur l'adsorption. Elle se compose d'une phase mobile et d'une phase stationnaire. La phase stationnaire est une couche mince de matériel adsorbant (ici du gel de silice sur une plaque d'aluminium). La phase mobile est le mélange de solvants qui va entraîner les composés à se séparer le long de la phase stationnaire. En faisant des dépôt de substances (sur une ligne de dépôt) et en déposant la plaque dans une cuve

mince Solution T : mise en solution d'une capsule dans 1 litre de solution d'HCl 0,2 mol/L , puis filtrée. 1.1.Préparation des phases: * Phase stationnaire: Identifier une plaque de gel de silice Marquer la ligne de dépôt à 1,5 cm du bord inférieur. Réactiver les plaques de gel de silice à l'étuve à 110° C pendant 15 min. *Phase mobile: (sous la hotte) Mettre environ 8 mL de phase mobile dans une cuve et laisser saturer au moins 20 min. Composition de la phase mobile: n butanol

gel de silice. Ce matériau est très polaire. Il faut donc utiliser un éluant apolaire. Ainsi lors de l'injection d'une solution, les produits polaires sont retenus dans la colonne, contrairement aux produits apolaire qui sortent en tête. L'inconvénient d'une telle phase, c'est une détérioration rapide au cours du temps du gel de silice, ce qui entraîne un manque de reproductibilité des séparations. - La phase inverse : La phase inverse est majoritairement composée de silice greffées

de silice, ce matériau est très polaire. Lors de l’injection d’une solution, les produits polaires seront retenus dans la colonne et les produits apolaires sortiront en tête de colonne. La phase inverse : Constitué de silice greffée par des chaines linéaires de 8 ou 18 carbones, ce matériau est apolaire. Cette phase nécessite donc un éluant polaire (H2O ou MeOH par exemple). Dans ce cas, ce seront les composés polaires qui sortiront en premiers. Contrairement à la phase normale, la silice de

solution organique. Nous avons ensuite prélevé le surnageant de cette solution correspondant aux lipides en prenant en compte les différences de solubilité. Enfin nous avons fait migrer ce surnageant lors de deux chromatographies sur couche mince de silice afin de séparer et d’identifier les différents lipides. PRINCIPE 1/ Tout d’abord nous avons effectué l’extraction des différents constituants lipidiques du jaune d’œuf grâce à un solvant d’extraction. On prélève ainsi le jaune d’œuf lyophilisé

des constituants d’un mélange à l’aide d’un solvant mobile qui les entraîne à travers une phase fixe. La chromatographie permet de séparer et d’analyser les constituants d’un mélange en le faisant circuler à travers un milieu fixe inerte (alumine, silice…) à l’aide d’un solvant mobile (gaz, liquide) qui l’entraîne. Chaque constituant adopte une vitesse de migration qui lui est propre en fonction de sa solubilité dans la phase mobile et de son affinité pour la phase fixe qui tend à le retenir. Finalement