Polyacrylamide

tableau ci-dessous reprend les caractéristiques des principaux polymères. Formule CH2 CH2 n Nom Polyéthylène Symbole PE Usages Pellicules Plastiques antichoc (valises...) CH3 CH CH2 Polypropylène n PP NH2 C CH O CH2 n Polyacrylamide PA Tissus synthétiques CH2 CH n Polystyrène PS Emballages CH CH2 H3C O C O n n Polyméthacrylate de méthyle Polyvinyle chlorure PMMA Plexiglas CH CH2 Cl PVC Tuyauteries © Dunod – La photocopie non

écrit la séquence de l’ADN complémentaire. • • • 2006 - 2007 Biologie génique - Pr A. Raisonnier 131/183 Caractérisation des acides nucléiques 9.21 Séquençage : image du gel BG 74 • Le gel de séquençage est un gel de polyacrylamide très fin dans lequel migrent des fragments d’acides nucléiques incolores, marqués à leur extrémité 3’ par un didésoxynucléotide fluorescent (ddN*). Le laser émet une lumière d’excitation qui passe à travers le gel et les ddN* excités réémettent

(ou plus). Son existence a été mise en évidence dans les années 1970 par l'équipe de G. Blobel (Prix Nobel 1999). Un ARN messager codant pour une protéine de sécrétion est traduit in vitro (TIV) avec des ribosomes libres. Analysée en gel de polyacrylamide, la protéine synthétisée est plus longue que celle trouvée in vivo dans les cellules (elle possède le peptide signal en plus). Si l'on ajoute des microsomes (vésicules de RE) au milieu de TIV, la protéine synthétisée a une taille normale

Protection 55:414-418. O'Byrne, C. P., and I. R. Booth. 2002. Osmoregulation and its importance to foodborne microorganisms. International Journal of Food Microbiology 74:203-216. O'Driscoll, B., C. G. M. Gahan, and C. Hill. 1997. Two-Dimensional Polyacrylamide Gel Electrophoresis Analysis of the Acid Tolerance Response in Listeria monocytogenes LO28. Applied Environmental Microbiology 63:2679-2685. Peleg, M., and C. M. Penchina. 2000. Modelling microbial survival during exposure to a lethal agent with

Société Française de Cosmétologie Annexe III- 1ère partie Substances III-23 *N.B. : INCI donnés à titre indicatif. Ne figurent pas sur le texte officiel. à usage restreint Restrictions Numéro d'ordre a 66 Substances [INCI*] b Polyacrylamides Champ d'application et / ou usage c Concentration maximale autorisée dans le produit cosmétique fini d Conditions d'emploi et avertissements à reprendre obligatoirement sur l'étiquetage f Autres limitations et exigences e a) Produits de

tube. Les produits de la réaction, dans chaque tube, seront des fragments qui tous commencent à l'extrémité 3' de l'amorce et qui tous se terminent à chaque A possible, T, G ou C. Après séparation de ces fragments par électrophorèse en gel de polyacrylamide dénaturant, les quatre pistes révèlent directement la séquence. D'autres méthodes, utilisant des réactions chimiques spécifiques de bases pour obtenir les familles de fragments sont également utilisées. 1.2.4 PCR : REACTION DE POLYMERISATION

MINÉRALES Risque de rupture du préservatif lors de l'utilisation avec des corps gras ou des lubrifiants contenant des huiles minérales (huile de paraffine, huile de silicone, etc...). CONTRE-INDICATION Utiliser un lubrifiant hydrosoluble (glycérine, polyacrylamide...). PRILOCAINE + DAPSONE Risque d'addition des effets méthémoglobinisants, en particulier chez le nouveau-né. A prendre en compte + FLUTAMIDE Risque d'addition des effets méthémoglobinisants, en particulier chez le nouveau-né. A prendre

(b). Les microsphères (figure 1.2-b) sont des structures matricielles, de forme sphérique, constituées de polymères de préférence (bio)dégradables. Les premières microsphères ont été développées par Birrenbach et Speider (1976) en utilisant le polyacrylamide réticulé, un polymère non biodégradable. Par la suite, les systèmes biodégradables, à base de poly(alkyl cyanoacrylate) (PACA), ont été développés par Couvreur et al. (1979). Dans le cas de microsphères, le principe actif est soit incorporé à

preincubated twice with glutathione–Sepharose beads before incubation for 16 h at 4 1C with GST fusion proteins immobilized on Sepharose beads. Beads were washed five times in lysis buffer and once in PBS, and bound proteins were separated by SDS–polyacrylamide gel electrophoresis and transferred to nitrocellulose membranes. Talin was observed as described (Gebbie et al, 2004), with monoclonal anti-talin antibodies (169.477.5; Kreitmeier et al, 1995). To immunoprecipitate surface SibA, 6 Â 106 cells

d’échantillon (20 % Glycérol, 4 % SDS (Sodium Dodecyl Sulfate), 13 % tampon gel supérieur (0.5 M Tris-HCl, pH 6,8 ; 0.4 % SDS ; 0.0004 % bleu de Bromophénol). Les échantillons ont été dénaturés pendant 5 min, à 95°C, avant d’être séparés sur gel de polyacrylamide (13 % - 5 %), en présence de SDS (SDS-PAGE), dans du tampon de migration (25 mM Tris-HCl, pH 7,5 ; 200 mM Glycine ; 0.1 % SDS). Chaque migration a été réalisée en présence de marqueurs de poids moléculaire précolorés (Fermentas). Les protéines