Gel de silice

deuxième chromatographie sur couche mince qui va nous permettre d’identifier les lipides du jaune d’œuf par un solvant polaire Pour réaliser la chromatographie sur couche mince, nous déposons le surnageant de notre extraction sur une plaque de gel de silice. Ces dépôts seront analysés et identifiés grâce à des dépôts de lipides qui nous serviront de témoin. Pour identifier les dépôts, on calcule les rapports frontaux. Principe des manipulations du TP Pour débuter ce TP, il faut commencer par une

chromatographie 1. Obtention d'un chromatogramme On utilise une plaque à chromatographie. Elle est constituée par exemple d'une plaque de plastique ou d'aluminium sur laquelle est déposée une mince couche de gel de silice. Il peut aussi s'agir d'une simple feuille de papier. Le gel de silice constitue la phase fixe (ou stationnaire). On y trace, à quelque distance du bord inférieur, une ligne appelée ligne de dépôt, sur laquelle on dépose le mélange à séparer/analyser. On réalise aussi éventuellement

papier ou une plaque à chromatographie et une phase liquide appelée éluant. L'éluant est un solvant pur ou mélange de solvants qui entraîne les espèces à analyser par capillarité, alors que la phase fixe (matériau de la plaque : cellulose ou gel de silice) les retient. Les corps purs migrent plus ou moins vite, ce qui permet leur séparation. I. Réalisation de la chromatographie : 1. Préparation de la cuve • Si besoin, préparer le mélange de solvants qui constituera l’éluant, puis en verser

«  Doliprane 500 » Protocole : Dans un mortier on ecrasse un comprimé doliprane 500 g l’aide d’un pilon. Le solide blanc obtenu est dissous dans un peut d’éluant. On verse 10ml s’éluant dans la cuve à chromatographie. Sur une plaque à gel de silice on réalise 2 dépots (M), (P). Introduire la plaque dans la cuve à chromatographie. Observation : On observe que l’éluant migre dans la plaque, il entraîne avec lui le médicament et le paracétamol. On ne peut pas voir de tache colorées

deuxième chromatographie sur couche mince qui va nous permettre d’identifier les lipides du jaune d’œuf par un solvant polaire Pour réaliser la chromatographie sur couche mince, nous déposons le surnageant de notre extraction sur une plaque de gel de silice. Ces dépôts seront analysés et identifiés grâce à des dépôts de lipides qui nous serviront de témoin. Pour identifier les dépôts, on calcule les rapports frontaux. Principe des manipulations du TP Pour débuter ce TP, il faut commencer par une

deuxième chromatographie sur couche mince qui va nous permettre d’identifier les lipides du jaune d’œuf par un solvant polaire Pour réaliser la chromatographie sur couche mince, nous déposons le surnageant de notre extraction sur une plaque de gel de silice. Ces dépôts seront analysés et identifiés grâce à des dépôts de lipides qui nous serviront de témoin. Pour identifier les dépôts, on calcule les rapports frontaux. 2) Principe des manipulations du TP Pour débuter ce TP, il faut commencer par

uellement présentes dans la phase  organique 3. Identification 3.1/ front du solvant A ligne de dépôt L H C B 3.2/ Protocole de la chromatographie sur couche mince : Sur le bas d’une plaque d’aluminium recouverte de gel de silice, on trace au crayon à papier une ligne. On dépose à l’aide de têtes d’épingles, quelques gouttelettes des différentes espèces chimiques sur la ligne. Éventuellement, on sèche les dépôts au sèche­cheveux. On effectue à nouveau une série de dépôts

unité de volume On peut classer les méthodes chromatographiques d'après la nature des phases utilisées ou celle des phénomènes mis en oeuvre dans la séparation. Nature des phases: Phase fixe: La phase fixe peut être solide ou liquide. Les solides, silice ou alumine traitées, permettent la séparation des composants des mélanges grâce à leurs propriétés adsorbantes. Ils peuvent être employés comme remplissage d'une colonne (chromatographie par gravité et chromatographie à haute performance ou HPLC)

d'analyse chimique qualitative permettant la séparation et l'identification des espèces chimiques d'un mélange. TECHNIQUE DE LA CHROMATOGRAPHIE SUR COUCHE MINCE. 1) Phase fixe. Rectangle de papier filtre (environ 4 cm x 8 cm) ou plaque (gel de silice sur plastique ou aluminium). On trace au crayon, sans appuyer, un trait fin à 1 cm un trait fin à 7 cm du bas du rectangle de papier filtre ou de la plaque. 2) Phase mobile. C'est le

brut dans de l’acétate d’éthyle. • Sécher à l’étuve, à 80°C, le produit purifié. Le peser.     4. Contrôles de pureté • Mesurer la température de fusion du produit purifié (en présence de l’examinateur). • Réaliser une C.C.M. sur gel de silice :          - effectuer trois dépôts sur la plaque :          benzaldéhyde (1 goutte en solution dans 3à 4 mL d’éther)         dibenzylidèneacétone brute ( quelques cristaux en solution dans 3 à 4 mL d’éther)        dibenzylidèneacétone