Pipette

ces levures restent au contact de ces rayons pendant un long moment, la quantité de rayons UV sera en excès, ce qui provoquera alors la mort des cellules. Manipulation : -Matériel : Sur notre paillasse 1 boîte de pétri avec milieu de culture 1 pipette stérile, 1 étaloir stérile (au bureau) 1 bec benzène (brûleur à alcool) 1 carreau de délimitation de l’espace de travail. Un fil plastique Au bureau Alcool à 90° Eau de javel (attention ça dégrade les vêtements) diluée à ¼ et pure Du papier

peut ensuite effectuer des mesures précisesÉtape 1. Étape 2. Étape 3. Mesure du pHinitial de la solution d’acide CH3COOH (avant d’y ajouter de l’eau) Étape 4. Préparation de la pipette et de la burette Étape 5. Préparation de la solution à titrer Étape 6. Titrage pH-métrique Étape 7. Nettoyage D. Mode opératoire Étape

= j’en déduis que Glycémie et diabète Chapitre 1 TP n°1 Protocole expérimental :  Numérotez de 1 à 6, les tubes à essai, sur le haut et les pipettes pasteur.  Numérotez les puits de votre plaque de titration comme suit : 1 t0 (pour tube n°1 à 0 minute) puis 1 t10 (pour tube n°1 à 10 minutes). Faites la même chose pour les puits correspondant aux 5 autres tubes. Faire le test à l’eau iodée

le lavage des plaies et des muqueuses. Le principe actif est l'hypochlorite de sodium mais cette solution doit être stabilisée avec du permanganate de potassium KMnO 4.à 0,010g/L. Verrerie disponible : fioles : 1L, 500mL, 2050mL, 200mL, 50mL, 10mL pipettes : 50mL, 25mL, 20mL, 10mL, 5mL 1° On demande à un technicien de laboratoire de préparer 500 mL une solution de permangate de potassium à 3,16.10-3 mol/L. Le permangate étant à l'état solide. Décrire le protocole de prépation de cette solution en précisant

d’éthanol prélevés à l’éprouvette graduée, 4 mL de benzaldéhyde prélevés sous la hotte depuis la burette graduée, 10 mL de solution aqueuse d’hydroxyde de sodium à 3 mol.L−1 prélevés à l’éprouvette graduée et 1,0 mL de propanone prélevée avec une pipette jaugée depuis un becher posé devant la bouteille. Introduire un barreau aimanté dans l’erlenmeyer. Adapter un réfrigérant à air et agiter pendant 15 minutes. Pendant les 15 minutes, réaliser un schéma du dispositif. Après les 15 minutes, ajouter

MatérielDurant ces travaux pratiques s’étalant sur plusieurs jours, nous allons avoir besoin de différents matériels : Jour 1 :  · hygiène et sécurité : · Blouse · Lunettes · Gants de protections· expérience : · Eppendorf de 0,5 mL· Pipettes à piston (5-50 μL / 100-1000μL )· Cônes · Matériel pour prélever 4microL ? · Thermocycleur· un kit PCR Clean-up system · une colonne · une centrifugeuse · solution de lavage· Eppendorf de 1,5 mL· gel d’agarose 1% dans le tampon TAE· bain marie ·

5mL) -Etiquette : «Lait Témoin C - » -Une suspension témoin pour 2 postes Milieux: -7 mileux Baird-Parker (déjà coulées). 2 par poste -1 Viande-Foie par poste -1 Bouillon cœur-cervelle par poste -Billes de verre 3 lames -4 pipettes pasteur ( 1 pour ensemencer le bouillon,1 pour ensemencer VF, 1 pour 5 gouttes de bouillon, 1 pour 5 gouttes de plasma) -1 tubes à hémolyses (pour test coagulase) Test coagulase : -Plasma de lapin oxalate stérile sous forme liquide en tube

d’analyse demandée. On y ajoute les réactifs en fonction de l’analyse à faire. Pour le dosage du cholestérol HDL on procède comme suit : On pipette 500 µl de sérum dans un tube sec On y ajoute 50 µl de réactif HDL (précipitant) et on homogénéise On laisse reposer pendant 10min On centrifuge ensuite le tout à 4000 tours/minute pendant 15min On pipette 1000 µl de cholestérol dans un autre tube sec et on y ajoute 10ul du mélange de sérum obtenu après centrifugation. On homogénéise le tout

vinaigre (CH3COOH) - Une balance à vernier - Une nacelle de pesée - Un carton troué - Un thermomètre - Un verre de polystyrène - Du bicarbonate de sodium (NaHCO3) - Une pipette Manipulations: 1- Réaliser le montage illustré précédemment. 2- Mesurer 10ml de vinaigre à l'aide du cylindre gradué et de la pipette. 3- Verser le vinaigre dans le verre de polystyrène. 4- Mesurer la température du vinaigre et la noter dans le tableau des résultats. 5- Peser la nacelle de pesée à l'aide de

-solutions de glucose, fructose, saccharose à 1% dans l’eau distillée. -Tubes à essais - Réactif de Molisch (2 g α-naphtol + 100 ml Ethanol) -Eprouvette - H2SO4 concentré -Pipette -Poire d’aspiration Mode opératoire 1. Préparer 4 tubes à essai : mettez dans le premier tube 2 ml d’une solution de glucose, dans le deuxième tube 2 ml de solution de fructose, dans le troisième tube 2 ml de solution de saccharose et dans le quatrième