Boîte de Petri

milieu déshydraté), faire fondre la gélose pendant le minimum de temps nécessaire à sa reliquéfaction totale. - Refroidir et maintenir à 44-47°C. - Transférer 1 mL du produit à analyser et de ses dilutions décimales successives dans des boîtes de Petri stériles. - Couler 10 à 15 mL de milieu. - Homogénéiser parfaitement. - Laisser solidifier sur une surface froide. - Couler éventuellement 4 mL de gélose blanche stérile (Agar bactériologique type A A1010 à 15 g/L). - Laisser solidifier à nouveau.

munis de dispositifs de fermeture appropriés, capsules ou bouchons en caoutchouc ou en matière synthétique. 4.1.10 Pipettes graduées jusqu'à la pointe, pouvant délivrer 1 ml ± 0,02 ml ou 10 ml ± 0,2 ml ou 11 ml ± 0,2 ml. 4.1.11 boîtes de Pétri en verre transparent non coloré à fond de diamètre intérieur d'environ 90 mm. La profondeur intérieure doit être de 10 mm minimum. Le fond ne doit présenter aucune irrégularité susceptible OBJET ET DOMAINE D'APPLICATION La méthode est applicable

durée de croissance de cette souche jusqu’à la phase stationnaire sous agitation était autour de 12h du temps. Ce qui a conduit à faire différentes cultures sur 12h, par la mesure de la DO chaque heure et la culture sur boîte de Pétri pour le dénombrement de cellules ; ces boîte ont été incubées à 30°C dans une incubateur sans agitation. L’inoculation de boîtes a été effectuée après des dilutions successives, de10-5 à 10-7 pour les premières heures de cultures : à 0, 3 et 6h et de 10-6 à 10-8 pour

appareils. Faire une suspension inoculum de densité optimum en milieu NaCl à 0.85 % Médium ou dans du Suspension Médium. Dilué ensuite la suspension inoculum dans de l’ATB Médium puis, à l’aide d’un écouvillon, ensemencé l’ensemble de la surface de la boite de gélose utilisée. Enfin, déposer les disques d’antibiotique à étudier à l’aide du distributeur semi automatique ou manuellement avec Rapport de stage – DUT Génie Biologique 2009 / 2010 – Version finale 18 Université des Sciences et Techniques

de sodium. Ces 2 inhibiteurs permettent de sélectionner la culture des streptocoques du groupe D. Le milieu permet le développement de cocci Gram +. On peut observer que la boite de Petri est devenue noire donc on peut supposer que nous sommes en présence d’un Streptocoque D. Après les observations des boites de Petri, on effectue des cultures pures, un seul type de bactéries, et une coloration avec des échantillons pris sur le milieu EMB pour l’observation de bacilles et des échantillons pris

Rapport de stage initiationDépartement : Génie Bio-Industriel et Environnement Filière DUT : Génie Bio-Industriel Mémoire de Stage d’Initiation :Contrôle de qualité des produits semi-conserves d’anchois salées Encadré par :M. Abdellah NAJOUA : Responsable de laboratoire  Présenté par :Mouad EL KAOURISoutenue devant les membres de jury :Pr. Fouad ACHEMCHEM  : Professeur à l’école supérieure de

(attention! pas la levure pour gâteaux) - sel - eau Garniture: - 1 boîte de 400 g tomates concassées - 125 g de mozzarella (c'est un minimum) - huile d'olive - origan - basilic frais Préparation : Mélanger la farine avec une pincée de sel. Préparer la levure selon les instructions reportées sur le paquet (variable selon la marque). Disposer la farine en puits et verser au centre la levure et un verre d'eau légèrement tiède. Pétrir et ajouter de l'eau jusqu'à obtenir une pâte légèrement collante

Ziehl-Neelsen : - l’existence ou l’absence des mycobactéries dans un prélèvement - mycobac = Alcoolo-Acido-Résistantes (BAAR) = BK bacile de koch = Mycobacterium tuberculosis -possèdent une cire très rigide -interdit de les mettres dans la boite de petri Lohenstein Jensen : solide en tube pour myco DCL : désoxycholate citrate lactose - milieu selectif permet d’isoler les BGN - source de carbone : Lactose (ONPG test de b galactosidase) - indicateur de pH : rouge neutre -inhibiteur : désoxycholate

Filtrer. Le filtrat est noté Fr. La CCM : Matériel : FC, FF, Fr, erlenmeyers, béchers, plaque à chromatographie, cuve à élution, boîte de pétri, crayon à papier, pipette pasteur ou cure-dents, séchoir électrique Eluant : dichlorométhane + méthanol (mélange (1/1) Protocole : Préparer la cuve à chromatographie avec l’éluant. Couvrir avec une boîte de pétri. Préparer la plaque à chromatographie en déposant les 3 échantillons FF, FC et Fr sur la ligne de dépôt à 1 cm du bas de la plaque

scalpel, pince, ciseaux. * 9 flacons. * 5 pots de yaourts. * 1 boîte de pétri. Les conditions stériles sont indispensables pour éviter la contamination des milieux de culture par des bactéries. Avant de commencer l’expérience, nous nous sommes désinfecter les mains tant que possible en les lavant à l’alcool et nous avons stérilisé le plan de travail pour installer le bec bunzen et tout le matériel nécessaire (outils, pots et boîte de pétri) autour, dans la zone de stérilité : Nous avons choisi de