Boîte de Petri

soit transparente. - Couler l'agarose (à 55°C) sur les boîtes de Pétri de 5 cm du diametre sur une épaisseur d'environ 1 à 1,5 mm, ce qui correspond à 5 mL d'agarose par boîte. - Après coulage, laisser refroidir les gels jusqu'à solidification. NB Les boîtes ou les lames peuvent être conservées au réfrigérateur une fois le gel coulé, avant ou après formation des puits, 2- Sur un papier, dessinez un cercle représente la boîte de pétri et fait marquer un cercle au Centre. Dessiner 6 trous tout autour

| |Pipette graduée de 10 mL |Balance électronique | |Pipettes jaugées de 10mL et 20mL |Boite de Pétri | |Poire à pipeter |Spatule | |4 bécher(s) de 50mL (ou

Sardine, en utilisant le caractère « globule rouge ». Matériel : • poisson et 3 frottis fixés : sang humain, sang de poule, sang de l’espèce x, • une cuvette à dissection, scalpel, aiguille montée ou cure-dent, pipette pasteur, • verre de montre, boite de Pétri, lames de microscopie, compte-gouttes, flacon de sérum physiologique, essuie-tout, papier absorbant et alcool (ethanol) • 3 flacons pour coloration de frottis : N°1 = fixateur ; N° 2 et N° 3 = colorants • pissette d’eau distillée, sèche-cheveux

| • Berlin de 100 ml et de 250 ml • Ballon jaugé de 100 ml • Pipette de 20 ml et de 25 ml • Petit et gros entonnoir • Pro pipette • Pissette d’eau distillée • Boite de pétri • Balance • Tige de verre • Grand verre de montre • Chlorure de cuivre (ll) di hydraté (C = 0,5 M) • Hydrogène de sodium (Ci = 1 M) • Filtre à café de 1,84 g C. Mode Opératoire. Partie

l'électrophorèse sur gel d'agarose, et la minipréparation a l'aide du kit d'extraction de plasmide. Les résultat de cette expérience n'ont pas était très concluant pour ma part du fait de la sensibilité des différent dosage. En effet mes boites de pétri renfermait que 2 à 3 colonies de bactéries de couleur bleu. En revanche, sur l'électrophorèse des fragments de clones amplifiés, on distingue bien la présence du plasmide pour les 4 clones, et 3 différents fragments du phage lambda. On remarque que

Après l’identification au microscope des différents types bactériens, on cherche à isoler les bactéries du mélange pour permettre de les identifier. Pour cela nous allons utiliser la technique d’isolement par strie sur gélose coulée dans des boites de pétris (la méthode d’isolement par épuisement de la semence cf. schémas 1). Page 1/5 Nous allons coupler cette technique d’isolement des bactéries l’utilisation de milieux de culture sélectif à des groupes de bactéries. Nous allons utiliser trois milieux

suivant : une feuille de lierre bicolore (verte au milieu, blanche sur la tranche), de l'eau iodée, deux boîtes de pétri, un microscope. Puis on a suivi ce protocole : Exposer la plante choisie à la lumière pour permettre la photosynthèse Prélever une des des feuilles Prélever un fragment de la partie centrale verte de la feuille Le laisser tremper dans l'eau iodée dans une boîte de pétri Récupérer le fragment et l'observer au microscope Faire de même avec un fragment issu de la tranche blanche

85 - M.G : 22,5 ± 1 % - EST : 50 ± 1 % - G/S : 45 ± 1 % 1 vérification du poids Toute commercialisation de fromage que sa soit une boite de 8, 16, ou 24 portions, doit avoir un poids précis suivant les normes. Mettre toutes les portions sur une balance tarée (sans la boite), le poids affiché doit être égale ou supérieur au poids prescrit sur la boite. 2 Température La température doit se mesurer chaque 10min grâce a un thermomètre qu’on introduit directement dans les portions de

effilées * au lieu de n'utiliser que du beurre doux + du sel il est préférable de mettre moitié beurre doux, moitié beurre salé Réserver la moitié du jaune d'œuf qui servira à dorer le gâteau. Pétrir le reste de l'œuf avec le beurre, le sel, le sucre et éventuellement l'alcool. Ajouter la farine et pétrir jusqu'à ce que la pâte se détache des mains et puisse être roulée en boule. Si la pâte reste trop collante rajouter un peu de farine mais normalement ce n'est pas nécessaire. Etaler la pâte sur

déshydraté), faire fondre la gélose pendant le minimum de temps nécessaire à sa reliquéfaction totale. - Refroidir et maintenir à 44-47°C. - Transférer 1 mL du produit à analyser et de ses dilutions décimales successives dans des boîtes de Petri stériles. - Couler 10 à 15 mL de milieu. - Homogénéiser parfaitement. - Laisser solidifier sur une surface froide. - Couler éventuellement 4 mL de gélose blanche stérile (Agar bactériologique type A à 15 g/L). - Laisser solidifier à