Gelose

bactériologiques des eaux destinées à la consommation humaine. NT T 90-415: Essais des eaux- Recherche et dénombrement des spores de bactéries anaérobies sulfito-réductrices et de Clostridium sulfito-réducteurs- Méthode générale par incorporation en gélose en tubes profonds. NF T 90-421: Examens bactériologiques des eaux de piscines XP T 90-416: Essais des eaux- Recherche et dénombrements de entérocoques- Méthode générale par filtration sur membrane. NF EN ISO 5667-3: Qualité de l'eau- Echantillonnage

plaies, brûlures, escarres….. • Des infections locales profondes (méningées, pulmonaires, urinaires, intestinales…) • Des infections généralisées : septicémie B. CRITERES D’IDENTIFICATION 1. • • Particularités bactériologiques Ils donnent sur gélose des colonies de taille moyenne, à bords réguliers ou dentelés Leur extrême tolérance : o Vis-à-vis de la température (de 4 à 42°C) o Résistance à la plupart des inhibiteurs Cultivent sur les milieux sélectifs des Entérobactéries Résistent aux antiseptiques

Gram - Ensemencement de milieux solides gélosés. TCS : ce milieu permet de distinguer les différentes souches bactérienne en présence au J2 on peut a partir de ce milieu réaliser les tests enzymatiques de la catalase et l’oxydase. Vérification de pureté et pigments possible. Chapman : milieu ayant une concentration en Na Cl forte on peut vérifier le caractère halotolérants des bactéries il y a aussi le caractère mannitol présent sur ce milieu Gélose au sang : Milieu enrichi spécifique qui permet

l’avance à partir du milieu déshydraté), faire fondre la gélose pendant le minimum de temps nécessaire à sa reliquéfaction totale. - Refroidir et maintenir à 44-47°C. - Transférer 1 mL du produit à analyser et de ses dilutions décimales successives dans des boîtes de Petri stériles. - Couler 10 à 15 mL de milieu. - Homogénéiser parfaitement. - Laisser solidifier sur une surface froide. - Couler éventuellement 4 mL de gélose blanche stérile (Agar bactériologique type A à 15 g/L)

utilisé 5 milieux différents qui sont les suivants : La gélose VRBL : elle permet de dénombrer les coliformes totaux et les thermotolérants. Pour la préparer, on a versé  de poudre dans  300 mL d’eau pour la couche supérieure et pour la couche inférieure on a versé de poudre dans 250 mL d’eau. On met ensuite sous agitation magnétique et chauffage jusqu’à ce qu’il y ait ébullition. On la place au four avant son utilisation La gélose PCA : elle permet de dénombrer la flore totale aérobie

comparer ces deux techniques. Nous avons également réalisé la dernière partie du challenge test d’un savon liquide à J28. Observations microscopiques Nous réalisons une coloration de Gram pour les deux souches étudiés, à partir de la souche isolé sur gélose ordinaire. souche | J | forme | coque | taille, aspect | 1 µm, rond | gram | positif | souche | 10 | forme | bacille | taille, aspect | court, fin, droit | gram | négatif | Tests enzymatiques Pour la souche J, nous réalisons le test

heures à 37°C en atmosphère ordinaire. 4. Réalisation des témoins inoculum  Réaliser une dilution en série de l'inoculum, de la dilution 10-1 à la dilution 10-4.  Étaler, sous forme de strie, les dilutions 100, 10-1, 10-2, 10-3 et 10-4 sur deux géloses PCA (Plate Count Agar) pour dénombrement. Les stries sont réalisées à l'anse calibrée de 10 L. Doubler les stries pour les dilutions cibles 10-3 et 10-4.  Incuber 24 heures à 37°C en atmosphère ordinaire. TSTL ; travaux pratiques en microbiologie

bactérie qui se trouve à la surface de notre peau. Tout d’abord, nous devions étamper notre pouce sans aucun lavage sur une gélose, ensuite nous refaisions la même chose mais après lavage à l’eau, suivit d’un lavage au savon et finalement après avoir introduit notre pouce à l’intérieur de notre bouche. Pour ce qui est des résultats de Sébastien, le pousse appliqué sur la gélose initialement était sans aucun doute le plus consistant en bactérie, nous avons pu dénombrer une colonie d’au moins 20 gros

Faire sécher les boîtes à l’étuve. -Les lamelles préalablement stérilisées avec de l’alcool emballées dans le papier aluminium et mises dans l’autoclave sont insérées dans la gélose avec minutie dans la zone stérile. -Enfin les souches bactériennes sont ensemencées avec prudence sur la surface de la gélose et de la lamelle on utilisant l’anse de platine. 3. Mise en évidence de la capacité des bactéries à dégrader certains composés de synthèse : 3.1. Biodégradation des

des caractéristiques de l’antibiotique et sont influencées par divers facteurs. Il s’agit ( 2, 5, 7) : • du milieu gélosé : dont le choix est primordial pour la qualité du dosage. La composition et surtout le pH du milieu de culture interfèrent avec l’activité de l’antibiotique, sa diffusion et la croissance de la souche bactérienne. Il y a aussi l’épaisseur du milieu gélosé (3- 4mm) • de la souche de bactérie test : qui doit avoir une grande sensibilité vis à vis de l’antibiotique à doser