Solution de Lugol

La liqueur de Fehling produit un précipité rouge brique en présence de glucose . Couleur bleueLugolL’amidon (Glucides complexes; amidon) Le Lugol en présence de l’ amidon  provoque une coloration bleu-violet très intense,  Couleur jaunePapier brunLipides Tache translucideAutres tachesSoudan IV (démo)Lipides Apparition

au Lugol 2. Matériel et réactifs - Graines de maïs imbibées depuis quelques heures ou mis à germer - Gélose ou agar-agar et amidon soluble - Lugol dilué (1/10) - Boîtes de Pétri - Solution d’amylase - Bain-marie 3. Protocole expérimental - Préparer une solution contenant 1g de gélose, 1 g d’amidon soluble et 100 ml d’eau - Chauffer au bain-marie bouillant, en remuant avec un agitateur, jusqu’à ce que la solution devienne limpide - Verser la solution dans

réactifs utilisés en TP  L’eau iodée (=lugol) permet de tester la présence de polymère de glucose, tel que l’amidon (C6H10O5)n. Il suffit de placer quelques gouttes sur la substance à tester. Test positif : couleur bleu nuit / violacée Test négatif : l’eau iodée garde sa couleur initiale (jaune)  La liqueur de Fehling (bleue) permet de tester la présence de sucres réducteurs, comme le glucose C6H12O6. Il suffit de placer 1à 2 ml de la solution à tester dans un tube à essai, d’y rajouter

entier dans une obscurité totale, d’un bain-marie d’alcool, d’eau bouillante et d’un flacon de lugol. Nous avons un premier temps fait bouillir de l’eau avant de tremper la feuille de géranium sans le cache à l’intérieur. Ensuite, nous avons mis la feuille dans le bain-marie quelques minutes histoire qu’elle perde sa couleur. Nous avons mis la feuille dans une boite de pétri puis nous l’avons recouverte de lugol, colorant qui permet de voir la où l’amidon est présent, le but étant de distinguer l’endroit

rapprocher de sa ‘nourriture’. La solution mère ayant une DO600 =8,18, ce qui correspond à 8,18.109 UFC/ml, pour obtenir dans 10ml de bouillon LB une DO600 ~0,1nous mélangeons dans le LB un volume de 125µl de cette solution mère. Nous incubons le mélange à 30°C et lorsque celui-ci atteint la phase exponentielle de croissance, nous mesurons la DO600 et obtenons 0,309>0,2. Ensuite, pour obtenir des suspensions bactériennes à 108 UFC/ml , nous mélangeons 323µl de solution préalablement préparée(DO600=0

les milieux suivants : Milieux préparés : Cetrimide Chapman TS *Dénombrement direct à la cellule de thoma La solution bactérienne a été étudiée au microscope sur la cellule de Thoma . 0,1ml 0,1ml cellule de thoma V=16x1/20x1/20x0,1= 4x10-6mm³=4x10-6 ml Solution Mère 10-1 10-2 On a obtenu en moyenne N= 52 cellules (43,53,44,64,34,68,65,46) Concentration de cellules dans la solution C= N/V avec V = volume de la cellule de thoma C= 5200/4x10-6 = 1,3X109cellules/ml *Dénombrement indirect dilution

disposition, propose un protocole expérimental montrant le rôle de l’amylase dans l’hydrolyse de l’amidon. Faire vérifier par le professeur Ressources   : Matériel   : Tout le matériel pour faire des solutions : tubes à essai- pipettes, agitateur, bécher.….. Solution d’amidon Solution d’amylase proche de l’amylase produite par les glandes salivaires Liqueur de Fehling Eau iodée Porte-tube Un feutre Une pince en bois Plaque de coloration Chauffe tube Pissette d’eau distillée Document : Principe

avec l'eau. Nous mettons au fond des coquilles du diiode (solution de lugol de couleur jaune). Après quelques minutes, nous retirons les coquilles. Dans le bécher où était posé la coquille «dénudée», on peut apercevoir que l'eau a jaunit, surement à cause du lugol. Pour le vérifier nous versons un solution d'amidon, qui réagit avec le diiode pour former un précipité noir. Dans le bécher de la coquille intacte, l'amidon ne réagit pas: le lugol n'as pas traverser la coquille. Dans le bécher de la coquille

notre expérience, nos résultats obtenus pour le jaune d’œuf et le blanc d’œuf s’avèrent négatifs tandis que les résultats attendus devaient être positifs pour le jaune d’œuf et il devait y avoir une infime trace de glucide pour le blanc d’œuf. La solution n’a pas su détecter l’infime trace que l’on aurait dû retrouver dans le blanc d’œuf ou une interprétation fausse de la couleur a été commise, vu la minime quantité de glucides qu’il devait y avoir. La couleur de l’éprouvette nous paraissait bleue

TP3 : Antibiogramme a) Identification du gram de la bactérie b) But et principe Préparer sur lamelle une coloration des Grams à l’aide de plusieurs solution : du violet de gentiane, du lugol, de l’éthanol à 70% et de la fuchsine de ziehl. Cette manipulation a pour but de révéler le type de gram de l’échantillon à tester et de savoir si ces souches sont des bacilles ou des coccis grâce à une observation au microscope. c) Résultats Le test de coloration de Gram révèle une coloration rose. J’en