Gélose nutritive

sont rencontrés en pathologie infectieuse. B.1) Mode opératoire On prélève 1 ml de la dilution 10-1 pour la déposer dans une boite de pétri, la même chose est réaliser pour les dilutions décimales suivantes, puis on coule environ 13 ml du milieu gélose glucosée biliée au cristal violet et rouge neutre (VRBG) par boite. On homogénéise par des mouvements circulaires et on laisse refroidir les boites sur une surface plane à température ambiante. Ensuite en coule à nouveau environ 5 ml du même milieu

d’alcool isopropylique (100%) et le mettre dans l’ultracongélateur(-80oC) et y inscrire son emplacement. 12. Tremper un écouvillon stérile dans le fond du tube à centrifuger et tracer un ``S`` sur la surface de la gélose nutritive. Sceller au parafilm et bien identifer le dessous de la gélose 13. Incuber à 37o pendant 24h

par ensemencement d'une quantité connue d'urine étalée au râteau sur le milieu gélosé en boîte de Pétri, avec une anse calibrée (1 microlitre). Après 24h d'incubation à l'étuve à 37° C, chaque bactérie ou amas de bactéries présent dans l'urine donne naissance à une colonie visible à l'œil nu (unité formant colonie UFC). Le nombre de bactéries par millilitre est apprécié en comptant le nombre d'UFC sur la gélose, et en rapportant au volume d'urine ensemencé. 6. Identification

elle est parfois capsulée (antigène A), elle a une mobilité par ciliatures péritriche très réduite voire immobile. Son type respiratoire est aérobie-anaérobie facultatif. La catalase est positive et la réaction à l’oxydase est négative. Sur gélose nutritive à 37°C, elle forme en 24h des colonies de 1.5 à 3 mm de diamètre, arrondies, lisses (forme S), à bords réguliers qui sont légèrement opaque à reflets blanchâtres et crémeux. Les caractères biochimiques de cette bactérie sont : [pic] |Réduction

suffisante 10ml d’eau physiologique stérile dans le flacon à tester. Tapisser très rapidement les surfaces internes et le bouchon du flacon par rotation. Filtrer le contenu du flacon à travers un filtre 0.45µm. Déposer le filtre à la surface d’une gélose nutritive. Incuber à 37°C pendant 42h. Vérifier l’absence de colonie sur le filtre pour un contrôle positif. Méthodes 02  Emploi d’un bouillon nutritif TSB Mode opératoire : verser 10ml de bouillon TSB dans chaque flacon à contrôler. Incuber

vecteurs artificiels contenant des séquences d’origine plasmidique et phagiques, ils permettent d’intégrer des inserts plus grands (10kpb) phagemides Mélange de phages helper, d’agar fluide et de bactéries contenant le phagemide Dépôt sur une gélose nutritive solide Incubation Les bactéries ont poussée en tapis Les bactéries infectées ont éclaté : formation des plages de lyse 4 Cosmide Vecteur artificiel Hybride phage λ – plasmide Insert entre les extrémités cos de λ Encapsidation

l'expérience : On a cherché à savoir si les 2 gaz choisis avaient une influence sur des levures en cultures pour ainsi élargir les interpretations à l'échelle de l'Homme. Protocole : Matériels : - Plusieurs boites de pétris à disposition avec gélose nutritive * 2 gros bocaux en verres avec couvercle * Levure ADE2 * Carbonate de calcium en poudre * Acide chlorydrique liquide * Tète à combustion (Soufre) * Rateaux, savon, alcool ménager * Bec électrique * Feutres

 Culture : Si urines d’aspect clair : ensemencer en isolement sur GO (Gélose ordinaire nutritive) et Drigalski  Si urines d’aspect trouble : - prélèvement pur : ensemencer en isolement sur : GS Negram (Gélose au sang + acide nalidixique) et sur milieu Drigalski - prélèvement après dilution au 1/100ème dans l’eau physiologique : prendre 100 µl de la solution diluée obtenue et ensemencer en râteau sur gélose ordinaire.  Coproculture : - Aspect : pâteuse, molle, diarrhéique. - Examen

fait que les substrats présents sur les géloses ne conviennent pas pour tous les organismes. On peut aussi penser que les pH des géloses ne conviennent pas pour certains microorganismes (bactérie) préférant les milieux plus basiques (pH gélose compris entre 6 et 7). Il est un fait certain que nous pourrions encore discuter sur beaucoup d’autres facteurs influençant le développement des organismes du sol tels que : * La température d’incubation des géloses : en effet, la température est un facteur

→ Matériel et méthodes → Dictyostelium discoideum Nous avons travaillé sur une amibe sociale : Dictyostelium discoideum. Lors de conditions nutritionnelles favorables, elle se multiplie à l'état unicellulaire. Mais en conditions de carence nutritive, les cellules entament un cycle de développement pour aboutir à la formation d'un corps fructifère constitué d'une tige, sur laquelle repose une boule de spores. Nous avons donc chercher les facteurs nécessaires ou influençant l'entrée de l'amibe