Gélose nutritive

en culture sur une gélose nutritive. Matériel • Matériel de stérilisation (four, autoclave ou autocuiseur). • Etuve ou enceinte thermostatée 37°C +/- 1°C. • Matériel de microbiologie : boites de pétri stériles petit diamètre, pipettes 1 mL stériles (usage unique), flacons stériles. • Système de filtration sur membrane et membranes stériles, trompe à vide. • Gélose au Tergitol 7. Protocole • Travail préparatoire o Préparation de la gélose et conservation.

CYCLE DE DEVELOPPEMENT D’UN CHAMPIGNON HAPLOIDE. Une souche sauvage, (petit cube de gélose contenant des spores sombres) de Sordaria macroscopa, est déposée sur de la gélose nutritive, dans une boite de Pétri, à la lumière et température ambiantes. (On peut travailler sur des photographies de cultures de Sordaria.) Observer la culture (15 jours plus tard) à la loupe binoculaire. Prélever délicatement, sans gélose, à l’aide d’une pince fine, quelques fructifications (périthèces) et filaments (mycélium)

vivant (eubactérie, archée et eucaryote). Lors des tp de microbiologie, nous nous sommes essentiellement intéressés aux bactéries ainsi qu’aux méthodes d’observations de bactéries dans des échantillons naturels, au microscope ou dans des milieux gélosés. Au cours des trois tps, nous avons pu effectuer les manipulations suivantes : Manipulation 1 : étude d’un mélange bactérien avec un état frais et une coloration de Gram et un ensemencement sur milieux GNO, EMB, CHAPMAN et D-COCCOSEL Manipulation

1. Mise en évidence sur milieux gélosés 29 IV.2. Mesure de l’acidité libre du beurre inoculé 30 V. Mesure de l’activité protéolytique 30 V.1. Méthode sur milieux gélosés 30 V.2. Méthode de l’o-phthaldialdhyde 31 VI. Recherche de l’activité texturante 31 VII. Mesure de l’activité hémolytique 31 Chapitre 3 Résultats et discussion 33 I. Activité gazogène 33 II. Activité acidifiante 34 III. Activité lipolytique 36 III.1. Méthode sur géloses 36 III.2. Méthode d’acidité libre

de mycélium pur sur gélose afin de d’inoculer un substrat de colonisation à base de céréales. Vous pouvez commander directement ce substrat de colonisation ou essayer de produire votre mycélium à partir d’une empreinte de spores, mais aussi en clonant un morceau de tissu d’un champignon. Toute cette première étape doit être effectuée en respectant au maximum les précautions de stérilité afin d’éviter une contamination de la culture par d’autres organismes. Une solution nutritive contenant un gélifiant

Bactéries AEROBIES STRICTES. Si elles se développent dans la profondeur où il y a très peu d’02 ; bactéries ANAEROBIES STRICTES.L’02 leur est toxique. Certaines occupent tout le tube, ce sont les bactéries dites  AERO- ANAEROBIES facultatives; nutritive portée à ébullition pour chasser Enfin, certaines vivent à distance de la surface du tube, ce sont les bactéries MICRO-AEROPHILES ; elles auront besoin d’une certaine teneur en 02. Donc pour les cultures bactériennes, il faudra utiliser un dispositif

MILIEUX DE CULTURE Introduction Un milieu de culture doit satisfaire à toutes les exigences nutritives des micro-organismes : - apport de la source d'énergie, de carbone, d'azote; - besoins en ions minéraux, en facteurs de croissance; - pH et force ionique voisins des valeurs optimum. Il peut se présenter sous forme liquide ou solide, par addition : d'aqar ou gélose (intérêt : fusion au delà de 80°C, mais possibilité de le maintenir en surfusion à 45°C, température compatible avec l'incorporation

plus utilisée au laboratoire , on procède 50 ml d’échantillon à une filtration sur membrane en ester de cellulose, Cette méthode consiste à recueillir, identifier et énumérerà la surface filtrante stérile de 0,45 µ de diamètre de pores incubée sur gélose ( Il s’agit de milieux nutritifs solidifiés par l’apport d’agar. Leur composition permet de ne laisser se développer que le type de bactéries recherchées) sélective, lescolonies de la bactérie à étudier présentes à la surface dela membrane filtrante

informatique témoin P0-205 afin d’évaluer, à l’aide d’une comparaison avec ce dernier, la salubrité microbienne du laboratoire informatique P0-194. Les récoltes seront ensuite ensemencées dans deux milieux de culture différents, les géloses Rose Bengale Chloramphenicol (RBC) et les géloses de Tryptic Soy Agar (TSA). Il sera ensuite possible de vérifier la quantité de bactéries et de moisissures/levures ayant évolué dans les différents milieux. Tableau des résultats No. D’échantillon | Endroit du prélèvement

Associated Proteins). Rôle des flagelles : La locomotion Permet le déplacement de la bactérie .Mises en évidence sur des milieux semi-gélosés (diffusion dans la gélose) ou sur milieu solide (envahissement de la surface de la boîte. Ex : Proteus). Energie nécessaire : force protomotrice Intérêt physiologique : Se déplacer vers les substances nutritives : Chimiotactisme positif Fuir les substances toxiques Chimiotactisme négatif Rôle antigénique Les antigènes flagellaires (Ag H) déterminent