Mannitol

2) Mannitol Le mannitol est un agent osmotique qui inhibe la réabsorption tubulaire d’eau et de sel et diminue les capacités de concentration et de dilution du rein. Par son effet diurétique, il pourrait prévenir l’obstruction tubulaire et par son effet osmotique limiter l’oedème et la destruction cellulaire. Dans tous ces cas il est cependant difficile de séparer l'effet lié au mannitol de celui

de un à deux millimètres (1 à 2 mm), de couleur gris ombrée. - Milieu de CHAMPAN : Ce milieu dispose d’une forte concentration en Chlorure de sodium (NaCl) permettant un isolement sélectif des germes de Staphylocoques. La fermentation du mannitol va entraîner le virage de l’indicateur coloré au jaune. Il y aura un rouge de phénol autour des colonies : il s’agit de l’acidification du milieu. - Milieu Bile Esculine Azide (BEA) : Il s’agit d’un milieu de culture destiné à l’isolement

avec atmosphère : faible Lactose +.  Milieu de Chapman : ce milieu est sélectif pour les bactéries halophiles c’est à dire les staphylocoques ou les microcoques. L’utilisation du mannitol par les bactéries est marquée par une coloration jaune autour des colonies Mannitol + et une coloration rouge autour des colonies Mannitol –, du à l’indicateur de pH du rouge de phénol.  Milieu D-coccosel (DC) : milieu sélectif pour les coques Gram+, mais on l’utilise pour l’isolement des streptocoques, entérocoques

à l’extrémité non réductrice. VRAI : Cf. ci-dessous VRAI : Fonction pseudo-carbonyle de l’unité galactosyl libre. CH2OH CH2OH CH2OH CH2 O OH O O O OH OH OH OH HO OH CH OH 2 OH O HO O HO HO galactitol (dulcitol) QCM n°19: A (mannitol) Le mannitol peut correspondre au mannose (SSRR) réduit (mais ce n’est pas exclusif : fructose réduit également). Si l’on représente le polyol selon les conventions de Fischer : CH2OH HO HOH2C H HO HO H H H OH CH2OH HO HO H H H H OH OH CH2OH 2009-2010

seulement de la perméase Disque d’ONPG Test + : Coloration jaune autour du disque  ONPG + Incubation à 37° pendant 10 min Incubation 4- Milieu mannitol – mobilité:: - Ce milieu est une gélose semi-molle qui contient du mannitol et du rouge phénol. - Il est ensemencer par piqure centrale - Après 18-24 h d’incubation à 37°ce milieu nous montre si: - Le mannitol a été consommer par un virage vers le jaune - La bactérie est mobile (absence de la piqure) ou immobile (présence de la piqure) 5- Milieu à

TSC. 3. Lecture Chapman Observations Colonie jaune/ Halo jaune Résultat Mannitol+ Colonie rouge Mannitol- Interprétations Suspicion de S. aureus Baird Parker Observations Colonie noire/ Halo clair Résultat Réduction des tellurites/ Protéase+ (protéines jaune d’œuf) Autre Interprétations Suspicion de S. aureus Flore diverse Considérer comme suspectes les colonies mannitol+ après incubation à 37°C sur gélose de Chapman ou bien les colonies noires à halo

isolement sélectif de Staphylococcus tolérant les fortes concentrations en NaCl. On peut étudier la fermentation du mannitol par virage au jaune de l’indicateur coloré, le rouge de phénol, autour des colonies. Les colonies mannitol + sont entourées d’une auréole jaune. Il ne faut pas confondre la pigmentation des colonies et le virage de l’indicateur coloré. La pigmentation des colonies mannitol + en jaunes font suspecter qu’il s’agisse de Staphylococcus aureus. Apres la lecture directe on utilise l’Api

Catabolisme: Réactions de dégradaion qui libèrent de l'énergie (ATP) DEFINITION ET INTERET Le milieu Chapman est à la fois : _ selectif : staphylocoques ( coques Gram + ) _ d'orientation : différentiels mise en evidence de l'utilisation du mannitol

1/ La technique utilisée pour réaliser les rectangles séchés est : !! la Solubilisation des sucres. • Le mannitol est un polyol. Son pouvoir sucrant est plus faible que le saccharose (sucre de table) et son point de fusion (passage de lʼétat solide à lʼétat liquide) se situe entre 165°C et 169°C. • On utilise cette dernière propriété lors de la «friture» des pommes. La température! du mannitol liquide dans la casserole est supérieure à 169°C. • En plongeant les pommes taillées dans le sucre liquide

l’α-D-galactosidase, donne un diholoside. Ce dernier, après avoir été traité successivement par ICH3/NaH, HCl 2 mol.L-1 et NaBH4 conduit à un mélange de 2,3,4,6-tétra-O-méthyl-D-glucitol, de 1,3,4,6-tétra-O-méthyl-D-glucitol et de 1,3,4,6-tétra-O-méthyl-D-mannitol. Quels sont les oses qui constituent le diholoside ? Sous quelles formes cycliques sont-ils présents dans le diholoside ? Le diholoside est-il réducteur ? Si les trois réactions précédentes sont appliquées au triholoside, on met en évidence entre