Tp Hydrolyse

= Grain de blé 65 + 33 = 98 % Suite au broyage et au convertissage de l’an dernier, il y a donc eu 65% de farine, 33% d’issues et 2% de pertes dans les machines. Rendement global = % Caractéristiques d’un grain de blé : Lors du TP de pré-option à Sup Agro l’an dernier, nous avions pu comparer deux variétés différentes de grains : le Crousty et le Cap Horn, en leur faisant passer toute une série de tests de caractérisation tels que la granulométrie, la masse de 1000 grains, la

aldéhyde sur C1 Cetoses 1 fonction cétone sur C2 Oligosides (oligosaccharides) 2 ≤ x ≤10 Glucides X= 2 (diholoside) X= 3 (tiholoside) X= 4 (tetraholoside) Etc….. Holosides hydrolyse osides polyosides (polysaccharides) X unités > 10 1 ou plusieurs types d’oses Héterosides hydrolyse O-Héterosides N-Héterosides S-Héterosides Fraction glucidique + Fraction non glucidique = aglycone Homopolyosides (1 seul type d’oses) Hétéropolyosides (Pls types d’oses)

glycogénogenèse Le glycogène est donc l'association de plusieurs milliers de molécule de glucose formant des chaînes ramifiées. Sa formule chimique est (C6H10O5)n. glucose ramification Molécule de glycogène Par hydrolyse, le glycogène peut de nouveau fournir des molécules de glucose qui intégreront la circulation sanguine. Cette réaction est la glycogénolyse. Glycogène glucose

nucléaire contenu dans le noyau de la cellule se trouve sous forme de chromosomes linéaires dans celle-ci. La moitié du génome nucléaire d’un individu provient de la mère et l’autre moitié provient du père. L’objectif de ce TP est d’étudier le polymorphisme du gène nucléaire (28S) codant un ribozyme et celui du gène mitochondrial de la cytochrome oxydase I (COI) chez 2 espèces d’invertébrés ​C.gigas (huître creuse) et ​M.edulis ​(moule bleue)

est inconnu: Le pourcentage en masse de 2 dans le mélange est donc: La méthode demande une bonne linéarité de la réponse du détecteur chromatographique, ce qui n’est pas toujours le cas. Nous supposerons cependant que le détecteur utilisé en TP, le catharomètre, présente cette qualité. Étalonnage interne Dans cette méthode, on compare individuellement chacun des pics à évaluer au pic d’une substance étalon E , convenablement choisie, introduite en proportion connue dans le mélange à analyser

(TAT) de Rat, par PCR et son sousclonage dans le vecteur d’expression pGEM-T Amplification de l’ADNc Tyrosine Amino Transférase (TAT) de Rat, par PCR et son sous-clonage dans le vecteur d’expression pGEM-T. I) Introduction : L’objectif de ce Tp est de sous cloner l’ADNcomplémentaire à l’ARNm codant pour la Tyrosine Amino Transférase de Rat. Pour cela, l’ADNc sera inséré dans un plasmide et pourra donc être transcrit in vitro en ARN qui sera utilisé comme sonde pour étudier l’expression du

sang d’un individu 2 RÉSULTATS OBTENUS guins. L’agglutination est visible à l’œil nu CONSERVATION 1 an Précisez la date de TP A température ambiante 1 flacon simulant un sérum anti-Rhésus 30 lames à concavités DÉLAIS 40 cure-dents Commander au moins trois semaines à l’avance Notice technique et pédagogique Préciser la date exacte du TP sur le bon de commande. KIT DRÉPANOCYTOSE Réf. DREPAN HbA HbS HbA+HbS COMPOSITION DU KIT (pour 20 binômes) 10 bandes d’acétate

LISTE DE MATERIELS POUR LES TP DE BIOLOGIE MOLECULAIRE DETravaux Pratiques DE GENIE GENETIQUE L3-SVT CLONAGE de entDI. INTRODUCTION II. CLONAGE DE entD 1 – CONSTRUCTION DU PLASMIDE RECOMBINANT pCR 2.1-TOPO- entD 1.1- ISOLEMENT ET amplification de entD par pcr 1.1.1. LYSE CELLULAIRE AUX MICROONDES1.1.2. realisation de la PCR1.1.3

Le pourcentage en masse de 2 dans le mélange est donc: %age en masse = La méthode demande une bonne linéarité de la réponse du détecteur chromatographique, ce qui n’est pas toujours le cas. Nous supposerons cependant que le détecteur utilisé en TP, le catharomètre, présente cette qualité. Étalonnage interne Dans cette méthode, on compare individuellement chacun des pics à évaluer au pic d’une substance étalon E , convenablement choisie, introduite en proportion connue dans le mélange à analyser

gène indispensable à la transformation du saccharose en glucose (mutation) c’est à dire qu’ils ne peuvent plus transformer le saccharose en glucose et n’utilisent que le glucose disponible dans le milieu de culture. Le saccharose est naturellement hydrolysé en glucose et fructose dans le milieu de culture. | B5 | 5° étape : LA CONFRONTATION DES RESULTATS AVEC L’HYPOTHESE : Soit l’hypothèse est validée(= confirmée) : CONCLUSION | Notre hypothèse est validée. Les levures qui ont une information génétique